uwzględniając Traktat o funkcjonowaniu Unii Europejskiej,
uwzględniając dyrektywę Rady 2008/90/WE z dnia 29 września 2008 r. w sprawie obrotu materiałem rozmnożeniowym roślin sadowniczych oraz roślinami sadowniczymi przeznaczonymi do produkcji owoców 1 , w szczególności jej art. 4, art. 6 ust. 4, art. 9 ust. 1 i art. 13 ust. 3,
(1) Przepisy dotyczące kwalifikacji materiału przedelitarnego, elitarnego i kwalifikowanego oraz obrotu takim materiałem powinny uwzględniać różne cykle produkcyjne różnych rodzajów i gatunków objętych niniejszą dyrektywą.
(2) Konieczne jest zapewnienie zgodności materiału przedelitarnego z bardzo surowymi wymogami dotyczącymi zdrowia i jakości w celu zapewnienia zdrowia i jakości materiału rozmnożeniowego oraz roślin sadowniczych pochodzących z materiału przedelitarnego.
(3) W celu zapewnienia identyfikacji i jakości materiału przedelitarnego należy określić zasady dotyczące stwierdzania i weryfikacji jego zgodności odmianowej w odniesieniu do odmiany, do której należy dany materiał. Ponadto identyfikację i jakość materiału przedelitarnego należy zapewnić poprzez stosowanie zasad dotyczących jego rozmnażania, które mogą obejmować odnowienie i namnażanie. W celu zapewnienia zdrowia materiału przedelitarnego ważne jest określenie zasad dotyczących braku agrofagów, inspekcji, pobierania próbek i badań odpowiednio dla danych rodzajów i gatunków. Ponadto jakość tego materiału należy zapewnić poprzez przyjęcie zasad dotyczących wad.
(4) Aby zapewnić identyfikację i jakość podkładek nienależących do danej odmiany, podkładki te powinny być zgodne z opisem gatunków, do których należą.
(5) Konieczne jest zapewnienie identyfikacji roślin, z których zamierza się pobrać materiał do produkcji materiału elitarnego lub materiału kwalifikowanego, innych niż rośliny sadownicze. Rośliny te określa się jako "rośliny mateczne". Rośliny mateczne przeznaczone do produkcji materiału przedelitarnego ("przedelitarne rośliny mateczne") powinny spełniać takie same wymogi jak materiał przedelitarny. Przedelitarne rośliny mateczne i materiał przedelitarny powinny podlegać identyfikacji w całym procesie produkcji. Właściwy organ powinien ustalić zgodność przedelitarnej rośliny matecznej z opisem jej odmiany poprzez obserwację ekspresji cech charakterystycznych tej odmiany. Ponadto zgodność z opisem danej odmiany przedelitarnej rośliny matecznej i pozyskanego materiału przedelitarnego należy regularnie weryfikować.
(6) W przypadku materiału przeznaczonego do kwalifikacji zgodność z opisem odmiany należy ustalić w oparciu o opis urzędowy danej odmiany, który zapewnia odrębność, wyrównanie i trwałość tej odmiany, opis towarzyszący wnioskowi o rejestrację odmiany lub o prawo do ochrony odmian roślin lub opis uznany urzędowo. W przypadku odmiany z opisem uznanym urzędowo należy wymagać włączenia odmiany do rejestru krajowego w celu zapewnienia, by opis ten był odpowiedni dla materiału poddawanego kwalifikacji.
(7) W przypadku materiału przedelitarnego i materiału elitarnego ustalenie zgodności z opisem odmiany powinno być również możliwe w oparciu o opis towarzyszący wnioskowi o rejestrację odmiany w państwie członkowskim oraz w oparciu o opis towarzyszący wnioskowi o prawo do ochrony odmian roślin, pod warunkiem że sprawozdanie wykazujące odrębność, wyrównanie i trwałość danej odmiany jest już dostępne w Unii lub w państwie trzecim. Zapewnienie takiej możliwości ma na celu przyspieszenie początkowych etapów procesu kwalifikacji w przypadkach, gdy rejestracja odmiany jest bliska zakończenia, ale nadal w toku. W celu zapewnienia użytkownikom tego materiału przejrzystości i możliwości świadomego wyboru obrót tym materiałem należy jednak umożliwić dopiero po zakończeniu rejestracji odmiany.
(8) Należy stosować surowe przepisy w zakresie ochrony materiału przedelitarnego przed wszelkimi rodzajami zakażeń wywołanych przez agrofagi. W związku z tym dostawcy powinni utrzymywać przedelitarne rośliny mateczne i materiał przedelitarny w specjalnych obiektach zabezpieczonych przez dostępem owadów i zapewniających warunki zapobiegające zakażeniu przez wektory przenoszące zakażenie drogą powietrzną lub inne możliwe źródła zakażenia. Z tego samego powodu przedelitarne rośliny mateczne i materiał przedelitarny należy uprawiać lub produkować w odizolowaniu od gleby, w donicach pozbawionych gleby lub na sterylnych podłożach uprawowych. W celu uwzględnienia szczególnych potrzeb dotyczących produkcji należy jednak pozwolić państwom członkowskim na występowanie o zezwolenie na uprawę przedelitarnych roślin matecznych i materiału przedelitarnego na polach, pod warunkiem że zapewnione są odpowiednie środki zapobiegające zakażeniom wywołanym przez odpowiednie agrofagi.
(9) Dyrektywa Rady 2000/29/WE 2 określa zasady zapobiegające wprowadzaniu do Unii niektórych organizmów szkodliwych i ich rozprzestrzenianiu się w Unii. Obejmuje to wymogi dotyczące niektórych rodzajów i gatunków stanowiące uzupełnienie wymogów w zakresie kwalifikacji określonych w niniejszej dyrektywie w odniesieniu do organizmów szkodliwych objętych dyrektywą 2000/29/WE. Należy określić dodatkowe zasady odnoszące się do innych organizmów szkodliwych. W przypadku gdy agrofag może spowodować niedopuszczalną szkodę dla zdrowia lub użyteczności materiału przedelitarnego danego rodzaju lub gatunku, należy wymagać jego nieobecności. Agrofagi te należy wymienić w wykazie. W przypadku gdy dany agrofag może spowodować takie szkody, tylko jeżeli jego występowanie przekracza pewien poziom, należy zakazać jedynie jego występowania w ilościach przekraczających ten poziom. Agrofagi te należy wymienić oddzielnie, w innym wykazie niż te, co do których wymaga się nieobecności.
(10) Rośliny kandydackie na przedelitarne rośliny mateczne stanowią początek procesu produkcji i kwalifikacji materiału rozmnożeniowego i roślin sadowniczych. Z tego powodu powinny one być przedmiotem najsurowszych wymogów fitosanitarnych mających na celu zapewnienie nieobecności odnośnych agrofagów. W świetle biologii i cech charakterystycznych odnośnych rodzajów i gatunków roślin oraz odnośnych agrofagów należy wymagać przeprowadzania inspekcji wzrokowej roślin kandydackich na przedelitarne rośliny mateczne pod względem występowania agrofagów wymienionych w załączniku I. W przypadku wątpliwości dotyczących występowania tych agrofagów należy pobrać próbki z każdej rośliny kandydackiej na przedelitarną roślinę mateczną i poddać je badaniu w celu zapewnienia dokładnych ustaleń. Każdą roślinę kandydacką na przedelitarną roślinę mateczną należy zbadać pod względem występowania agrofagów wymienionych w załączniku II w celu zapewnienia nieobecności odnośnych agrofagów. Bardzo podobne wymogi powinny mieć zastosowanie do przedelitarnych roślin matecznych produkowanych poprzez odnowienie ze względu na ich znaczenie dla dalszych etapów procesu produkcji i kwalifikacji.
(11) W świetle biologii i cech charakterystycznych odnośnych rodzajów i gatunków roślin oraz odnośnych agrofagów należy wymagać przeprowadzania inspekcji wzrokowej przedelitarnych roślin matecznych lub materiału przedelitarnego pod względem występowania agrofagów wymienionych w załącznikach I i II. W przypadku wątpliwości dotyczących występowania tych agrofagów należy pobrać próbki z przedelitarnych roślin matecznych i z materiału przedelitarnego i poddać je badaniu w celu zapewnienia dokładnych ustaleń.
(12) W świetle biologii i cech charakterystycznych odnośnych rodzajów i gatunków roślin oraz odnośnych agrofagów należy ustanowić odpowiednie zasady dotyczące częstotliwości inspekcji wzrokowych, pobierania próbek i badań elitarnych roślin matecznych i materiału elitarnego, kwalifikowanych roślin matecznych i materiału kwalifikowanego. Zasady te powinny opierać się na doświadczeniu zdobytym przez właściwe organy urzędowe i producentów roślin sadowniczych podczas stosowania krajowych systemów kwalifikacji. Zasady te powinny uwzględniać potrzeby użytkowników poszczególnych kategorii.
(13) Obecność pewnych agrofagów, w szczególności nicieni, w glebie może powodować niedopuszczalne szkody dla zdrowia i użyteczności danych roślin, w przypadku gdy agrofagi te są żywicielami wirusów atakujących dane rodzaje lub gatunki. W związku z tym agrofagi te należy wymienić i zidentyfikować oddzielnie, a ich obecność w odpowiedniej glebie nie powinna być dozwolona, o ile badania nie wykażą, że są one wolne od odnośnych wirusów. Pobieranie próbek i badania powinny wykazać ewentualną obecność tych agrofagów lub odnośnych wirusów. Przy ustalaniu reguł dotyczących pobierania próbek i badań należy uwzględnić różne kategorie materiału rozmnożeniowego roślin sadowniczych. Dopuszczenie, pod pewnymi warunkami, aby pobierania próbek i badań nie przeprowadzać w miejscach, w których rośliny będące żywicielami nie były uprawiane na polu uprawy przez okres co najmniej pięciu lat stanowi jednak proporcjonalny środek.
(14) W przypadku gdy przeprowadza się pobieranie próbek i badanie, czynności te powinny odbywać się zgodnie z protokołami Europejskiej i Śródziemnomorskiej Organizacji Ochrony Roślin lub innymi protokołami uznanymi na poziomie międzynarodowym. Jest to niezbędne w celu zapewnienia aktualności praktyki pobierania próbek i badań w Unii w stosunku do rozwoju naukowego i technicznego na poziomie międzynarodowym. W przypadku gdy takie protokoły nie są dostępne, pobieranie próbek i badania powinny odbywać się zgodnie z odpowiednimi protokołami ustanowionymi na poziomie krajowym.
(15) Zranienia, zmiany zabarwienia, blizny, wysuszenie i inne wady mogą wpływać na jakość i użyteczność przedelitarnych roślin matecznych i materiału przedelitarnego. W związku z tym należy określić, że przedelitarne rośliny mateczne i materiał przedelitarny muszą być praktycznie wolne od wszelkich takich wad.
(16) Aby zagwarantować odpowiednią jakość materiału rozmnożeniowego, należy określić reguły utrzymywania go we właściwych warunkach. Warunki te powinny zależeć od kategorii materiału rozmnożeniowego i roślin sadowniczych poddawanych kwalifikacji. W świetle niedawnych zmian należy zezwolić także na stosowanie metody utrzymania polegającej na chłodzeniu do bardzo niskich temperatur, zwanej krioprezerwacją. Uznaje się ją za przydatne rozwiązanie alternatywne w stosunku do hodowli in vitro, ponieważ właściwości materiału rozmnożeniowego pozostaną niezmienione podczas przechowywania w tych temperaturach.
(17) Materiał elitarny stanowi kolejny etap procesu produkcji po materiale przedelitarnym. W związku z tym rośliny mateczne przeznaczone do produkcji materiału elitarnego ("elitarne rośliny mateczne") powinny pochodzić z uprawy materiału przedelitarnego lub namnażania z innych elitarnych roślin matecznych.
(18) Wymogi w zakresie identyfikacji, zdrowia i jakości dotyczące materiału elitarnego powinny być takie same jak wymogi dotyczące materiału przedelitarnego, ponieważ wymogi te są mają równie istotne znaczenie dla zdrowia i użyteczności materiału elitarnego. Należy jednak zezwolić na produkcję materiału elitarnego na otwartych polach w celu ułatwienia jego skutecznego rozmnażania i uzyskania kolejnych pokoleń i kategorii. W związku z tym wymogi dotyczące utrzymywania materiału elitarnego powinny dopuszczać utrzymywanie go w obiektach zabezpieczonych przed dostępem owadów lub na polach odizolowanych od potencjalnych źródeł zakażenia przez wektory przenoszące zakażenie drogą powietrzną, kontakt korzeni, zakażenie krzyżowe przez maszyny, narzędzia do szczepienia i wszelkie inne możliwe źródła zakażenia.
(19) Należy zezwolić na namnażanie przez kilka pokoleń elitarnych roślin matecznych hodowanych z materiału przedelitarnego, aby osiągnąć liczbę elitarnych roślin matecznych niezbędną do produkcji materiału elitarnego i kwalifikowanego. Różne pokolenia elitarnych roślin matecznych należy utrzymywać oddzielnie i zapewnić możliwość ich identyfikacji w trakcie całego procesu produkcji.
(20) Materiał kwalifikowany i kwalifikowane rośliny sadownicze mogą stanowić kolejny etap procesu produkcji po materiale przedelitarnym lub materiale elitarnym. W związku z tym rośliny mateczne przeznaczone do produkcji materiału kwalifikowanego ("kwalifikowane rośliny mateczne") powinny pochodzić z uprawy materiału przedelitarnego lub materiału elitarnego.
(21) Aby zapewnić zharmonizowaną procedurę stwierdzania i weryfikacji zgodności z opisem danej odmiany, należy przyjąć minimalne wymogi odnoszące się do materiału rozmnożeniowego i roślin sadowniczych, które mają być zakwalifikowane jako materiał CAC. Wymogi te powinny być mniej rygorystyczne niż wymogi dotyczące materiału przedelitarnego, elitarnego i kwalifikowanego, ponieważ materiał CAC wzbudza w użytkownikach mniejsze oczekiwania w zakresie jego aspektów zdrowotnych i jakościowych, gdyż w jego przypadku stosuje się prostsze procedury i etapy produkcji. Dostawcy powinni jednak zapewnić identyfikację materiału przeznaczonego do rozmnażania. Ponadto należy zapewnić stosowanie norm dotyczących jakości i zdrowia, odpowiednich w odniesieniu do uprawy materiału CAC oraz oczekiwań użytkowników tego materiału rozmnożeniowego. W świetle charakteru agrofagów atakujących niektóre gatunki Citrus L., Fortunella Swingle i Poncirus Raf. konieczne jest określenie szczegółowych zasad inspekcji wzrokowej, pobierania próbek i badań w celu zapewnienia właściwej jakości i zdrowia odpowiedniego materiału rozmnożeniowego lub odpowiednich roślin sadowniczych.
(22) Aby umożliwić właściwemu organowi przeprowadzanie inspekcji urzędowych i sprawdzenie, czy materiał rozmnożeniowy i rośliny sadownicze spełniają normy jakości i zdrowia roślin do celów urzędowej kwalifikacji określone w niniejszej dyrektywie, dostawca powinien wprowadzić plan identyfikacji i monitorowania punktów krytycznych w procesie produkcji materiału rozmnożeniowego i roślin sadowniczych w odniesieniu do odpowiednich rodzajów i gatunków oraz prowadzić rejestry tego monitorowania. Plan i rejestry inspekcji polowych, pobierania próbek i badań należy przechowywać przez czas, w którym odpowiedni materiał rozmnożeniowy lub rośliny sadownicze pozostają pod kontrolą dostawcy, i przez okres co najmniej trzech lat od momentu usunięcia lub wprowadzenia do obrotu tego materiału rozmnożeniowego lub tych roślin sadowniczych. Okres ten jest niezbędny, aby umożliwić wykrywanie agrofagów na roślinach drzewiastych, w przypadkach gdy objawy mogą stać się widoczne dopiero kilka lat po wystąpieniu zakażenia.
(23) Państwa członkowskie powinny zapewnić urzędowe inspekcje materiału rozmnożeniowego i roślin sadowniczych podczas produkcji i obrotu, aby zweryfikować zgodność z wymogami i warunkami określonymi w niniejszej dyrektywie. Aby zapewnić zharmonizowaną procedurę przeprowadzania inspekcji urzędowych, należy określić reguły odnoszące się do inspekcji wzrokowej i, w stosownych przypadkach, pobierania próbek i badań.
(24) Aby uniknąć jakichkolwiek zakłóceń w handlu, należy umożliwić państwom członkowskim zezwalanie, przez okres przejściowy, na obrót na ich własnym terytorium materiałem rozmnożeniowym i roślinami sadowniczymi wyprodukowanymi z przedelitarnych, elitarnych i kwalifikowanych roślin matecznych lub z roślin matecznych CAC, które istniały już w dniu rozpoczęcia stosowania niniejszej dyrektywy, nawet jeśli ten materiał lub te rośliny sadownicze nie spełniają nowych warunków.
(25) Należy uchylić dyrektywy Komisji 93/48/EWG 3 i 93/64/EWG 4 .
(26) Środki przewidziane w niniejszej dyrektywie są zgodne z opinią Stałego Komitetu ds. Materiału Rozmnożeniowego oraz Roślin Rodzajów i Gatunków Owocowych,
PRZYJMUJE NINIEJSZĄ DYREKTYWĘ:
DEFINICJE I PRZEPISY OGÓLNE
Definicje
Do celów niniejszej dyrektywy stosuje się następujące definicje:
Przepisy ogólne
WYMOGI DLA MATERIAŁU ROZMNOŻENIOWEGO ORAZ, W STOSOWNYCH PRZYPADKACH, DLA ROŚLIN SADOWNICZYCH
Wymogi dotyczące materiału przedelitarnego
Wymogi dotyczące kwalifikacji materiału przedelitarnego
Zamiast usuwać tę roślinę mateczną lub ten materiał dostawca może zastosować odpowiednie środki, aby ponownie zapewnić zgodność tej rośliny matecznej lub tego materiału ze wspomnianymi wymogami.
Wymogi dotyczące kwalifikacji podkładek nienależących do danej odmiany jako materiału przedelitarnego
Zamiast usuwać tę podkładkę dostawca może zastosować odpowiednie środki, aby ponownie zapewnić zgodność tej podkładki ze wspomnianymi wymogami.
Wymogi dotyczące dopuszczenia przedelitarnej rośliny matecznej
Dopuszczenie to odbywa się na podstawie wyników urzędowej inspekcji i badań oraz rejestrów i procedur zgodnie z art. 30.
Rośliny owocujące poddaje się inspekcji wzrokowej w najbardziej odpowiednich okresach roku, biorąc pod uwagę warunki klimatyczne i uprawowe dotyczące roślin należących do danych rodzajów i gatunków.
Wymogi dotyczące dopuszczania podkładek nienależących do danej odmiany
Właściwy organ dopuszcza podkładkę nienależącą do danej odmiany jako przedelitarną roślinę mateczną, jeżeli jest ona zgodna z opisem swojego gatunku i z przepisami art. 8-12.
Dopuszczenie to odbywa się na podstawie wyników urzędowej inspekcji i badań oraz rejestrów i procedur stosowanych przez dostawcę zgodnie z art. 30.
Weryfikacja zgodności z opisem odmiany
Właściwy organ i w stosownych przypadkach dostawca regularnie weryfikują zgodność przedelitarnych roślin matecznych i materiału przedelitarnego z opisem ich odmiany, zgodnie z art. 5 ust. 2 i 3 odpowiednio do danej odmiany i zastosowanej metody rozmnażania.
Poza regularną weryfikacją przedelitarnych roślin matecznych i materiału przedelitarnego właściwy organ i w stosownych przypadkach dostawca po każdym odnowieniu weryfikują przedelitarne rośliny mateczne będące wynikiem tego odnowienia.
Wymagania dotyczące utrzymania przedelitarnych roślin matecznych i materiału przedelitarnego
Rośliny kandydackie na przedelitarne rośliny mateczne utrzymuje się w warunkach zabezpieczających przed dostępem owadów, fizycznie odizolowane od przedelitarnych roślin matecznych utrzymywanych w obiektach, o których mowa w akapicie pierwszym, do czasu zakończenia wszystkich badań dotyczących zgodności z art. 9 ust. 1 i 2.
Wymogi dotyczące zdrowia roślin kandydackich na przedelitarne rośliny mateczne i przedelitarnych roślin
matecznych produkowanych poprzez odnowienie
Daną roślinę kandydacką na przedelitarną roślinę mateczną uznaje się za wolną od agrofagów wymienionych w załączniku I w odniesieniu do danego rodzaju lub gatunku na podstawie inspekcji wzrokowej w obiektach i na polach.
Inspekcję wzrokową przeprowadza właściwy organ i w stosownych przypadkach dostawca.
W przypadku wątpliwości związanych z obecnością tych agrofagów właściwy organ i w stosownych przypadkach dostawca przeprowadzają pobranie próbek i badanie danej rośliny kandydackiej na przedelitarną roślinę mateczną.
Daną roślinę kandydacką na przedelitarną roślinę mateczną uznaje się za wolną od agrofagów wymienionych w załączniku II w odniesieniu do danego rodzaju lub gatunku na podstawie inspekcji wzrokowej w obiektach i na polach oraz na podstawie pobrania próbek i badania.
Inspekcję wzrokową, pobranie próbek i badanie przeprowadza właściwy organ i w stosownych przypadkach dostawca.
Pobieranie próbek i badanie odbywa się w najbardziej odpowiednim okresie roku, biorąc pod uwagę warunki klimatyczne i uprawowe dotyczące danej rośliny oraz biologię agrofagów właściwych dla tej rośliny. W razie wątpliwości związanych z obecnością tych agrofagów pobieranie próbek i badanie odbywa się również w dowolnym momencie w roku.
Właściwy organ i w stosownych przypadkach dostawca przekazują próbki do laboratoriów urzędowo zatwierdzonych przez właściwy organ.
Metodą badania na obecność wirusów, wiroidów, chorób wirusopodobnych i fitoplazm w odniesieniu do roślin kandydackich na przedelitarne rośliny mateczne są testy biologiczne na roślinach wskaźnikowych. Inne metody badania można zastosować, jeżeli na podstawie poddanych wzajemnej ocenie informacji naukowych państwo członkowskie uznaje, że dają one równie wiarygodne wyniki jak testy biologiczne na roślinach wskaźnikowych.
Przedelitarna roślina mateczna wyprodukowana przez odnowienie musi być wolna od wirusów i wiroidów wymienionych w załączniku II w odniesieniu do danego rodzaju lub gatunku.
Taka przedelitarna roślina mateczna zostaje uznana za wolną od tych wirusów i wiroidów na podstawie inspekcji wzrokowej przeprowadzanej w obiektach, na polach i w partiach oraz na podstawie pobrania próbek i badania.
Inspekcję wzrokową, pobranie próbek i badanie przeprowadza właściwy organ i w stosownych przypadkach dostawca.
Wymogi dotyczące zdrowia przedelitarnych roślin matecznych i materiału przedelitarnego
Właściwy organ oraz, w stosownych przypadkach, dostawca pobierają próbki przedelitarnej rośliny matecznej lub materiału przedelitarnego i badają je na obecność RNQP wymienionych w załączniku II i objętych wymogami załącznika IV, w odniesieniu do danego rodzaju lub gatunku oraz kategorii.
W przypadku wątpliwości dotyczących obecności RNQP wymienionych w załączniku I właściwy organ i, w stosownych przypadkach, dostawca przeprowadzają pobranie próbek i badanie danych przedelitarnych roślin matecznych i danego materiału przedelitarnego.
Właściwy organ i, w stosownych przypadkach, dostawca przekazują próbki do laboratoriów urzędowo zatwierdzonych przez właściwy organ.
Wymogi dotyczące gleby w przypadku przedelitarnych roślin matecznych i materiału przedelitarnego
Pobranie próbek przeprowadza właściwy organ i w stosownych przypadkach dostawca.
Pobieranie próbek i badanie przeprowadza się przed zasadzeniem danych przedelitarnych roślin matecznych lub danego materiału przedelitarnego oraz powtarza się je podczas ich wzrastania, w przypadkach gdy istnieje podejrzenie obecności agrofagów, o których mowa w akapicie pierwszym.
Pobieranie próbek i badanie przeprowadza się z uwzględnieniem warunków klimatycznych i biologii agrofagów wymienionych w załączniku III, w przypadkach gdy agrofagi te są właściwe dla danych przedelitarnych roślin matecznych i danego materiału przedelitarnego.
Pobierania próbek i badań nie przeprowadza się, jeżeli właściwy organ uznaje na podstawie inspekcji urzędowej, że gleba jest wolna od wszelkich agrofagów wymienionych w załączniku III w odniesieniu do danego rodzaju lub gatunku, będących żywicielami wirusów atakujących dany rodzaj lub gatunek.
Wymogi dotyczące wad mogących obniżyć jakość
Przedelitarne rośliny mateczne i materiał przedelitarny uznaje się za praktycznie wolne od wad na podstawie inspekcji wzrokowej. Inspekcję wzrokową przeprowadza właściwy organ i w stosownych przypadkach dostawca. Zranienia, odbarwienia, blizny lub wysuszenie są uznawane za wady, jeżeli mają wpływ na jakość i użyteczność materiału rozmnożeniowego.
Wymogi dotyczące namnażania, odnowienia i rozmnażania przedelitarnych roślin matecznych
Protokoły, o których mowa w akapicie pierwszym niniejszego ustępu, muszą zostać przetestowane na danych rodzajach i gatunkach przez okres uznawany za odpowiedni dla tych rodzajów i gatunków. Okres ten uznaje się za odpowiedni, jeżeli umożliwia on fenotypową walidację roślin w odniesieniu do zgodności z opisem odmiany na podstawie obserwacji produkcji owoców lub wegetatywnego rozwoju podkładek.
Wymogi dotyczące namnażania, odnowienia i rozmnażania poprzez mikrorozmnażanie przedelitarnych roślin matecznych
Państwa członkowskie stosują wyłącznie protokoły przetestowane na danych rodzajach i gatunkach przez okres uznawany za wystarczający, aby umożliwiał fenotypową walidację roślin w odniesieniu do zgodności z opisem odmiany na podstawie obserwacji produkcji owoców lub wegetatywnego rozwoju podkładek.
Wymogi dotyczące materiału elitarnego
Wymogi dotyczące kwalifikacji materiału elitarnego
Elitarna roślina mateczna spełnia jeden z następujących wymogów:
Zamiast usuwać tę roślinę mateczną lub ten materiał dostawca może zastosować odpowiednie środki, aby ponownie zapewnić zgodność tej rośliny matecznej lub tego materiału ze wspomnianymi wymogami.
Zamiast usuwać tę podkładkę dostawca może zastosować odpowiednie środki, aby ponownie zapewnić zgodność tej podkładki ze wspomnianymi wymogami.
Wymogi dotyczące zdrowia elitarnych roślin matecznych i materiału elitarnego
Właściwy organ oraz, w stosownych przypadkach, dostawca pobierają próbki elitarnej rośliny matecznej lub materiału elitarnego i badają je na obecność RNQP wymienionych w załączniku II i objętych wymogami załącznika IV, w odniesieniu do danego rodzaju lub gatunku oraz kategorii.
W przypadku wątpliwości dotyczących obecności RNQP wymienionych w załączniku I właściwy organ i, w stosownych przypadkach, dostawca przeprowadzają pobranie próbek i badanie danych elitarnych roślin matecznych i danego materiału elitarnego.
Właściwy organ i, w stosownych przypadkach, dostawca przekazują próbki do laboratoriów urzędowo zatwierdzonych przez właściwy organ.
Wymogi dotyczące gleby w przypadku elitarnych roślin matecznych i materiału elitarnego
Pobranie próbek przeprowadza właściwy organ i w stosownych przypadkach dostawca.
Pobieranie próbek i badanie przeprowadza się przed zasadzeniem danych elitarnych roślin matecznych lub danego materiału elitarnego oraz powtarza się je podczas ich wzrastania, w przypadkach gdy istnieje podejrzenie obecności agrofagów, o których mowa w akapicie pierwszym.
Pobieranie próbek i badanie przeprowadza się z uwzględnieniem warunków klimatycznych i biologii agrofagów wymienionych w załączniku III, w przypadkach gdy agrofagi te są właściwe dla danych elitarnych roślin matecznych i danego materiału elitarnego.
Pobierania próbek i badań nie przeprowadza się, jeżeli właściwy organ uznaje na podstawie inspekcji urzędowej, że gleba jest wolna od wszelkich agrofagów wymienionych w załączniku III w odniesieniu do danego rodzaju lub gatunku, będących żywicielami wirusów atakujących dany rodzaj lub gatunek.
Wymagania dotyczące utrzymania elitarnych roślin matecznych i materiału elitarnego
Warunki namnażania
Wymogi dotyczące materiału kwalifikowanego
Wymogi dotyczące kwalifikacji materiału kwalifikowanego
Kwalifikowana roślina mateczna spełnia jeden z następujących wymogów:
Materiał rozmnożeniowy i rośliny sadownicze rozmnaża się z kwalifikowanej rośliny matecznej, która spełnia wymogi dotyczące gleby określone w art. 22.
Zamiast usuwać tę roślinę mateczną lub ten materiał dostawca może zastosować odpowiednie środki, aby ponownie zapewnić zgodność tej rośliny matecznej lub tego materiału ze wspomnianymi wymogami.
Zamiast usuwać tę podkładkę dostawca może zastosować odpowiednie środki, aby ponownie zapewnić zgodność tej podkładki ze wspomnianymi wymogami.
Wymogi dotyczące zdrowia kwalifikowanych roślin matecznych i materiału kwalifikowanego
Właściwy organ oraz, w stosownych przypadkach, dostawca pobierają próbki kwalifikowanej rośliny matecznej lub materiału kwalifikowanego i badają je na obecność RNQP wymienionych w załączniku II i objętych wymogami załącznika IV, w odniesieniu do danego rodzaju lub gatunku oraz kategorii.
W przypadku wątpliwości dotyczących obecności RNQP wymienionych w załączniku I właściwy organ i, w stosownych przypadkach, dostawca przeprowadzają pobranie próbek i badanie danych kwalifikowanych roślin matecznych i danego materiału kwalifikowanego.
Właściwy organ i, w stosownych przypadkach, dostawca przekazują próbki do laboratoriów urzędowo zatwierdzonych przez właściwy organ.
Wymogi dotyczące gleby w przypadku kwalifikowanych roślin matecznych i materiału kwalifikowanego
Pobranie próbek przeprowadza właściwy organ i w stosownych przypadkach dostawca.
Pobieranie próbek i badanie przeprowadza się przed zasadzeniem danej kwalifikowanej rośliny matecznej i powtarza się je podczas jej wzrastania, w przypadkach gdy istnieje podejrzenie obecności agrofagów, o których mowa w akapicie pierwszym.
Pobieranie próbek i badanie przeprowadza się z uwzględnieniem warunków klimatycznych i biologii agrofagów wymienionych w załączniku III, w przypadkach gdy agrofagi te są właściwe dla danych kwalifikowanych roślin matecznych i danego materiału kwalifikowanego.
Pobierania próbek i badań nie przeprowadza się, jeżeli właściwy organ uznaje na podstawie inspekcji urzędowej, że gleba jest wolna od wszelkich agrofagów wymienionych w załączniku III w odniesieniu do danego rodzaju lub gatunku, będących żywicielami wirusów atakujących dany rodzaj lub gatunek.
O ile nie stwierdzono inaczej, pobierania próbek i badania nie przeprowadza się w przypadku kwalifikowanych roślin sadowniczych.
Wymogi dotyczące materiału CAC
Warunki dotyczące materiału CAC innego niż podkładki nienależące do danej odmiany
Warunki dotyczące materiału CAC w przypadku podkładek nienależących do danej odmiany
Zgodność z opisem odmiany
(16 )
Wymogi dotyczące zdrowia w przypadku materiału C AC
Dostawca pobiera próbki materiału pochodzącego z zidentyfikowanego źródła lub materiału CAC i badaje na obecność RNQP wymienionych w załączniku II i objętych wymogami załącznika IV, w odniesieniu do danego rodzaju lub gatunku oraz kategorii.
W razie wątpliwości dotyczących obecności RNQP wymienionych w załączniku I dostawca przeprowadza pobranie próbek i badanie materiału pochodzącego z zidentyfikowanego źródła lub danego materiału CAC.
Po etapie produkcji materiał rozmnożeniowy CAC i rośliny sadownicze CAC w partiach są wprowadzane do obrotu wyłącznie w przypadku, gdy zostaną uznane za wolne od oznak lub objawów występowania agrofagów wymienionych w załącznikach I i II na podstawie inspekcji wzrokowej przeprowadzonej przez dostawcę.
Dostawca stosuje środki mające na celu zapewnienie zgodności z wymogami określonymi w ust. 1 na podstawie załącznika IV w odniesieniu do danego rodzaju lub gatunku oraz kategorii.
Wymogi dotyczące wad
Materiał CAC uznaje się za praktycznie wolny od wad na podstawie inspekcji wzrokowej. Zranienia, odbarwienia, blizny lub wysuszenie są uznawane za wady, jeżeli mają wpływ na jakość i użyteczność materiału rozmnożeniowego.
Wymogi dotyczące punktu produkcji, miejsca produkcji lub obszaru
Oprócz wymogów dotyczących zdrowia i gleby, ustanowionych w art. 9, 10, 11, 16, 17, 21, 22 i 26, materiał rozmnożeniowy i rośliny sadownicze są produkowane zgodnie z wymogami dotyczącymi punktu produkcji, miejsca produkcji lub obszaru, określonymi w załączniku IV, w celu ograniczenia występowania RNQP wymienionych w tym załączniku w odniesieniu do danego rodzaju lub gatunku.
SZCZEGÓŁOWE WYMOGI DOTYCZĄCE DOSTAWCÓW ZAJMUJĄCYCH SIĘ PRODUKCJĄ LUB REPRODUKCJĄ MATERIAŁU ROZMNOŻENIOWEGO I ROŚLIN SADOWNICZYCH
Plan identyfikacji i monitorowania punktów krytycznych procesu produkcji
Podczas produkcji materiału rozmnożeniowego i roślin sadowniczych państwa członkowskie zapewniają, aby dostawcy wprowadzili plan identyfikacji i monitorowania punktów krytycznych procesu produkcji odpowiednio do odnośnych rodzajów i gatunków. Plan ten dotyczy co najmniej następujących elementów:
Przechowywanie informacji dotyczących monitorowania i udostępnianie ich do zbadania
INSPEKCJE URZĘDOWE
Ogólne wymogi dotyczące inspekcji urzędowych
PRZEPISY KOŃCOWE
Transpozycja
Państwa członkowskie stosują te przepisy od dnia 1 stycznia 2017 r.
Przepisy przyjęte przez państwa członkowskie zawierają odniesienie do niniejszej dyrektywy lub odniesienie takie towarzyszy ich urzędowej publikacji. Metody dokonywania takiego odniesienia określane są przez państwa członkowskie.
Środki przejściowe
Państwa członkowskie mogą do dnia 31 grudnia 2029 r. zezwalać na obrót nasionami i siewkami wyprodukowanymi z przedelitarnych, elitarnych i kwalifikowanych roślin matecznych lub materiału CAC, które istniały przed dniem 1 stycznia 2017 r. i zostały urzędowo zakwalifikowane jako materiał CAC lub spełniały warunki tej kwalifikacji przed dniem 31 grudnia 2029 r. Przy wprowadzaniu do obrotu takie materiały identyfikuje się poprzez odniesienie do niniejszego artykułu na etykiecie i w dokumencie.
Wejście w życie
Niniejsza dyrektywa wchodzi w życie dwudziestego dnia po jej opublikowaniu w Dzienniku Urzędowym Unii Europejskiej.
Adresaci
Niniejsza dyrektywa skierowana jest do państw członkowskich.
W imieniu Komisji | |
José Manuel BARROSO | |
Przewodniczący |
Wykaz RNQP, w odniesieniu do których, zgodnie z art. 9ust. l,art. lOust. l,art. lóust. l,art. 21 ust. 1 iart. 26 ust. 1, wymaga się przeprowadzenia inspekcji wzrokowej oraz, w razie wątpliwości, pobrania próbek i badania
Rodzaj lub gatunek | RNQP | ||
Castanea sativa Mill. | Grzyby i organizmy grzybopodobne | ||
Cryphonectria parasitica (Murrill) Barr [ENDOPA] | |||
Mycosphaerellapunăiformis Verkley & U. Braun [RAMUEN] | |||
Phytophthora cambivora (Petri) Buisman [PHYTCM] | |||
Phytophtěwra cinnamomi Rands [PHYTCN] | |||
Wirusy, wiroidy, choroby wirusopodobne i fitoplazmy | |||
Czynnik mozaiki kasztanowca | |||
Citrus L, Fortuneüa Swingle, Poncirus Raf. | Grzyby i organizmy grzybopodobne | ||
Phytophthora citrophthora (R.E.Smith & E.H.Smith) Leonian [PHYTCO] | |||
Phytophthora nicotianae var. parasitica (Dastur) Waterhouse [PHYTNP] | |||
Owady i roztocze | |||
Aleurothrixusfloccosus Maskell [ALTHFL] | |||
Parabemisia ňóňęŕĺ Kuwana [PRABMY] | |||
Nicienie | |||
Pratylenchus vulnus Allen & Jensen [PRATVU] | |||
Tylenchulus semipenetrans Cobb [TYLESE] | |||
Corylus aveüatm L. | Bakterie | ||
Pseudomonas aveüanae Janse et ai. [PSDMAL] | |||
Xanthomonas arboricola pv. Corylina (Miller, Bollen, Simmons, Gross & Barss) Vauterin, Hoste, Kersters & Swings [XANTCY] | |||
Grzyby i organizmy grzybopodobne | |||
Armillarielh melka (Vahi) Kummer [ARMIME] | |||
Verticillium albo-atrum Reinke & Berthold [VERTAA] | |||
Verticillium dahliae Kleb [VERTDA] | |||
Owady i roztocze | |||
Phytoptus avellanae Nalepa [ERPHAV] | |||
Cydotiia obbtiga Mill, i Pyras L. | Bakterie | ||
Agrobaäerium tumefaciens (Smith & Townsend) Conn [AGRBTU] | |||
Erwinia amylovora (Burrill) Winslow et al. [ERWIAM] | |||
Pseudomonas syringae pv. Syringae van Hall [PSDMSY] | |||
Grzyby i organizmy grzybopodobne | |||
Armillariella melka (Vahi) Kummer [ARMIME] | |||
Chondrostereum purpureum Pouzar [STERPU] | |||
Glomerella ungulata (Stoneman) Spaulding & von Schrenk [GLOMCI] | |||
Neofabraea alba Desmazičres [PEZIAL] | |||
Neofabraea malicorticis Jackson [PEZIMA] | |||
Neoneđria ditissima (Tulasne & Ń Tulasne) Samuels & Rossman [NECTGA] | |||
Phytophthora cactorum (Lebert & Cohn) J.Schröter [PHYTCC] | |||
SclerophorapallidaYăo & Spooner [SKLPPA] | |||
Verticillium albo-atrum Reinke & Berthold [VERTAA] | |||
Verticillium dahliae Kleb [VERTDA] | |||
Owady i roztocze | |||
Eriosoma lanigerum Hausmann [ERISLA] | |||
Psylla spp. Geoffroy [1PSYLG] | |||
Nidenie | |||
Meloidogyne hapla Chitwood [MELGHA] | |||
Meloidogynejavanica Chitwood [MELGJA] | |||
Pratylenchuspenetrans (Cobb) Filipjev & Schuurmans-Stekhoven [PRATPE] | |||
Pratylenchus vulnus Allen & Jensen [PRAT VU] | |||
Ficus carica L. | Bakterie | ||
Xanthomonas campestris pv.fici (Cavara) Dye [XANTFI] | |||
Grzyby i organizmy grzybopodobne | |||
Armillariella mellea (Vahl) Kummer [ARMIME] | |||
Owady i roztocze | |||
Ceroplastes rusei Linnaeus [CERPRU] | |||
Nicienie | |||
Heteroderafici Kirjanova [HETDFI] | |||
Meloidogyne arenaria Chitwood [MELGAR] | |||
Meloidogyne incognita (Kofold & White) Chitwood [MELGIN] | |||
Meloidogynejavanica Chitwood [MELGJA] | |||
Pratylenchus penetrans (Cobb) Filipjev & Schuurmans-Stekhoven [PRATPE] | |||
Pratylenchus vulnus Allen & Jensen [PRAT VU] | |||
Fragaria L | Bakterie | ||
Candidatus Phlomobacterfiagariae Zreik, Bové & Gamier [PHMBFR] | |||
Grzyby i organizmy grzybopodobne | |||
Podosphaera aphanis (Wallroth) Braun & Takamatsu [PODOAP] | |||
Rhizoctoniafiagariae Hussain & W.E.McKeen [RHIZFR] | |||
Vertidllium albo-atrum Reinke & Berthold [VERTAA] | |||
Vertidllium dahliae Kleb [VERTDA] | |||
Owady i roztocze | |||
Chaetosiphonfiagaefolii Cockerell [CHTSFR] | |||
Phytonemuspallidus Banks [TARSPA] | |||
Nidenie | |||
Ditylenchus dipsad (Kuehn) Filipjev [DITYDI] | |||
Meloidogyne hapla Chitwood [MELGHA] | |||
Pratylenchus vulnus Allen & Jensen [PRATVU] | |||
Wirusy wiroidy choroby wirusopodobne i fitoplazmy | |||
Candidatus Phytoplasma asteris Lee et al. [PHYPAS] | |||
Candidatus Phytoplasma fiagariae Valiűnas, Staniulis & Davis [PHYPFG] | |||
Candidatus Phytoplasma pruni [PHYPPN] | |||
Candidatus Phytoplasma solani Quaglino et al. [PHYPSO] | |||
Fitoplazma fyllodiozy koniczyny [PHYP0 3] | |||
Fitoplazma wybujałości liści truskawki [PHYP7 5] | |||
Jughtis regia L | Bakterie | ||
Agrobađerium tumefaciens (Smith & Townsend) Conn [AGRBTU] | |||
Xanthomonas arhoricola pv.Juglandi (Pierce) Vauterin et al. [XANTJU] | |||
Grzyby i organizmy grzybopodobne | |||
Armillariella meika (Vahi) Kummer [ARMIME] | |||
Chondrostereum purpureum Pouzar [STERPU] | |||
Neoneđria ditissima (Tulasne & C. Tulasne) Samuels & Rossman [NECTGA] | |||
Phytophthora cactorum (Lebert & Cohn) J.Schröter [PHYTCC] | |||
Owady i roztocze | |||
Epidiaspis leperii Signorét [EPIDBE] | |||
Pseudaulacaspis pentagona Targioni-Tozzetti [PSEAPE] | |||
Quadraspidiotuspernidosus Comstock [QUADPE] | |||
Malus ĚŘ. | Bakterie | ||
Agrobađerium tumefaciens (Smith & Townsend) Conn [AGRBTU] | |||
Erwinia amylovora (Burrill) Winslow et al. [ERWIAM] | |||
Pseudomonas syringae pv. Syringae van Hall [PSDMSY] | |||
Grzyby i organizmy grzybopodobne | |||
Armillariella mellea (Vahi) Kummer [ARMIME] | |||
Chondrostereum purpureum Pouzar [STERPU] | |||
Glomerella ungulata (Stoneman) Spaulding & von Schrenk [GLOMCI] | |||
Neofabraea alba Desmazičres [PEZIAL] | |||
Neofabraea malicorticis Jackson [PEZIMA] | |||
Neoneäria ditissima (Tulasne & Ń Tulasne) Samuels & Rossman [NECTGA] | |||
Phytophthora cactorum (Lebert & Cohn) J.Schröter [PHYTCC] | |||
SclerophorapallidaYăo & Spooner [SKLPPA] | |||
Verticillium albo-atrum Reinke & Berthold [VERTAA] | |||
Verticillium dahliae Kleb [VERTDA] | |||
Owady i roztocze | |||
Eriosoma lanigerum Hausmann [ERISLA]Psyíío spp. Geoffroy [1PSYLG] | |||
Nidenie | |||
Meloidogyne hapla Chitwood [MELGHA] | |||
Meloidogynejavanica Chitwood [MELGJA] | |||
Pratylenchuspenetrans (Cobb) Filipjev & Schuurmans-Stekhoven [PRATPE] | |||
Pratylenchus vulnus Allen & Jensen [PRAT VU] | |||
Oka europaea L. | Bakterie | ||
Pseudomonas savastanoi pv. savastanoi (Smith) Gardan et al. [PSDMSA] | |||
Nidenie | |||
Meloidogyne arenaria Chitwood [MELGAR] | |||
Meloidogyne incognita (Kofold & White) Chitwood [MELGIN] | |||
Meloidogynejavanica Chitwood [MELGJA] | |||
Pratylenchus vulnus Allen & Jensen [PRAT VU] | |||
Wirusy, wiroidy choroby wirusopodobne i fitoplazmy | |||
Wirus żółknięcia liści oliwki [OLYAV0] | |||
Wirus żółknięcia nerwów oliwki [OVYAV0] | |||
Wirus żółtej pstrości i zamierania oliwki [OYMDAV] | |||
PistaciaveraL* | Grzyby i organizmy grzybopodobne | ||
Phytophthora cambivora (Petri) Buisman [PHYTCM] | |||
Phytophthora cryptogea Pethybridge & Lafferty [PHYTCR] | |||
Rosellinia necatrix Prillieux [ROSLNE] | |||
Verticillium dahliae Kleb [VERTDA] | |||
Nidenie | |||
Pratylenchus penetrans (Cobb) Filipjev & Schuurmans-Stekhoven [PRATPE] | |||
Pratylenchus vulnus Allen & Jensen [PRAT VU] | |||
Prunus domestica L, i Prunus dulcís (ĚŘĺă) Webb | Bakterie | ||
Agrobađerium tumefaciens (Smith & Townsend) Conn [AGRBTU] | |||
Pseudomonas syringae pv. morsprunorum (Wormald) Young, Dye & Wilkie [PSDMMP] | |||
Grzyby i organizmy grzybopodobne | |||
Phytophthora cactorum (Lebert & Cohn) J.Schröter [PHYTCC] | |||
Verticillium dahliae Kleb [VERTDA] | |||
Owady i roztocze | |||
Pseudaulacaspis pentagona Targioni-Tozzetti [PSEAPE] | |||
Quadraspidiotus perniciosus Comstock [QUADPE] | |||
Nidenie | |||
Meloidogyne arenaria Chitwood [MELGAR] | |||
Meloidogyne incognita (Kofold & White) Chitwood [MELGIN] | |||
Meloidogyne javanica Chitwood [MELGJA] | |||
Pratylenchuspenetrans (Cobb) Filipjev & Schuurmans-Stekhoven [PRATPE] | |||
Pratylenchus vulnus Allen & Jensen [PRAT VU] | |||
Prunus armetűaca L. | Bakterie | ||
Agrobađerium tumefaciens (Smith & Townsend) Conn [AGRBTU] | |||
Pseudomonas syringae pv. morsprunorum (Wormald) Young, Dye & Wilkie [PSDMMP] | |||
Pseudomonas syringae pv. Syringae van Hall [PSDMSY] | |||
Pseudomonas viridiflava (Burkholder) Dowson [PSDMVF] | |||
Grzyby i organizmy grzybopodobne | |||
Phytophthora cactorum (Lebert & Cohn) J.Schröter [PHYTCC] | |||
Verticillium dahliae Kleb [VERTDA] | |||
Owady i roztocze | |||
Pseudaulacaspis pentagona Targioni-Tozzetti [PSEAPE] | |||
Quadraspidiotus perniciosus Comstock [QUADPE] | |||
Nicienie | |||
Meloidogyne arenaria Chitwood [MELGAR] | |||
Meloidogyne incognita (Kofold & White) Chitwood [MELGIN] | |||
Meloidogyne javanica Chitwood [MELGJA] | |||
Pratylenchus penetrans (Cobb) Filipjev & Schuurmans-Stekhoven [PRATPE] | |||
Pratylenchus vulnus Allen & Jensen [PRAT VU] | |||
Prunus avium L. i Prunus cerasus L. | Bakterie | ||
Agrobađerium tumefaciens (Smith & Townsend) Conn [AGRBTU] | |||
Pseudomonas syringae pv. morsprunorum (Wormald) Young, Dye & Wilkie [PSDMMP] | |||
Grzyby i organizmy grzybopodobne | |||
Phytophthora cactorum (Lebert & Cohn) J.Schröter [PHYTCC] | |||
Owady i roztocze | |||
Quadraspidiotus perniciosus Comstock [QUADPE] | |||
Nidenie | |||
Meloidogyne arenaria Chitwood [MELGAR] | |||
Meloidogyne incognita (Kofold & White) Chitwood [MELGIN] | |||
Meloidogyne javanica Chitwood [MELGJA] | |||
Pratylenchuspenetrans (Cobb) Filipjev & Schuurmans-Stekhoven [PRATPE] | |||
Pratylenchus vulnus Allen & Jensen [PRAT VU] | |||
Prunus persica (L.) Batsch i Prunus saikýna Lindley | Bakterie | ||
Agrobađerium tumefaciens (Smith & Townsend) Conn [AGRBTU] | |||
Pseudomonas syrěngae pv. morsprunorum (Wormald) Young, Dye & Wilkie [PSDMMP] | |||
Pseudomonas syrěngae pv. persicae (Prunier, Luisetti &. Gardan) Young, Dye & Wilkie [PSDMPE] | |||
Grzyby i organizmy grzybopodobne | |||
Phytophthora cactorum (Lebert & Cohn) J.Schröter [PHYTCC] | |||
Verticillium dahliae Kleb [VERTDA] | |||
Owady i roztocze | |||
Pseudaulacaspis pentagona Targioni-Tozzetti [PSEAPE] | |||
Quadraspidiotus perniciosus Comstock [QUADPE] | |||
Nidenie | |||
Meloidogyne arenaria Chitwood [MELGAR] | |||
Meloidogyne incognita (Kofold & White) Chitwood [MELGIN] | |||
Meloidogyne javanica Chitwood [MELGJA] | |||
Pratylenchus penetrans (Cobb) Filipjev & Schuurmans-Stekhoven [PRATPE] | |||
Pratylenchus vulnus Allen & Jensen [PRAT VU] | |||
Ribes L. | Grzyby i organizmy grzybopodobne | ||
Diaporthe strumella (Fries) Fuckel [DIAPST] | |||
Miaosphaeragrossularie (Wallroth) Léveillé [MCRSGR] | |||
Podosphaera mors-uvae (Schweinitz) Braun & Takamatsu [SPHRMU] | |||
Owady i roztocze | |||
Cecidophyopsis ribis Westwood [ERPHRI] | |||
Dasineura tetensi Rübsaamen [DASYTE] | |||
Pseudaulacaspis pentagona Targioni-Tozzetti [PSEAPE] | |||
Quadraspidiotus perniciosus Comstock [QUADPE] | |||
Tetranychus urticae Koch [TETRUR] | |||
Nidenie | |||
Aphelenchoides ritzemahosi (Schwartz) Steiner & Buhrer [APLORI] | |||
Ditylenchus dipsaci (Kuehn) Filipjev [DITYDI] | |||
Wirusy wiroidy choroby wirusopodobne i fitoplazmy | |||
Mieszana infekcja wirusa mozaiki aukuby i żółtaczki czarnej porzeczki | |||
Rűbus L. | Bakterie | ||
Agrobađerium spp. Conn [1AGRBG] | |||
Rhodococcusfascians Tilford [CORBFA] | |||
Grzyby i organizmy grzybopodobne | |||
Peronospora rubi Rabenhorst [PERO RU] | |||
Owady i roztocze | |||
Resseliella theobaldi Barnes [THOMTE] | |||
Vaccittiutn L. | Bakterie | ||
Agrobađerium tumefaciens (Smith & Townsend) Conn [AGRBTU] | |||
Grzyby i organizmy grzybopodobne | |||
Diaporthe vaccinii Shear [DIAPVA] | |||
Exobasidium vaccinii (Fuckel) Woronin [EXOBVA] | |||
Godronia cassandrae (anamorfa Topospora myrtilli) Peck [GODRCA] Pucciniastrum minimum Sydow & P. Sydow [THEKMI] |
Wykaz RNQP, w odniesieniu do których, na podstawie art. 9 ust. 2 i 4, art. 10 ust. 1, art. 16 ust. 1, art. 21 ust. 1, art. 26 ust. 1 oraz załącznika IV wymaga się przeprowadzenia inspekcji wzrokowej oraz, w stosownych przypadkach, pobrania próbek i badania
Rodzaj lub gatunek | RNQP | ||
Castanea sativa Mill. |
Grzyby i organizmy grzybopodobne Phytophthora ramorum (izolaty z UE) Werres, De Cock & Man in 't Veld [PHYTRA] |
||
Citrus L., Fortunella Swingle i Poncirus Raf. |
Bakterie Spiroplasma citri Saglio et al. [SPIRCI] Grzyby i organizmy grzybopodobne Plenodomus tracheiphilus (Petri) Gruyter, Aveskamp & Verkley [DEUTTR] Wirusy, wiroidy, choroby wirusopodobne i fitoplazmy Czynnik cristacortis cytrusowych [CSCC00] Wiroid łuszczycy kory cytrusowych [CEVD00] Czynnik impietratura cytrusowych [CSI000] Wirus plamistości liści cytrusowych [CLBV00] Wirus psorozy cytrusowych [CPSV00] Wirus tristeza cytrusowych (izolaty z UE) [CTV000] Wirus różnobarwności cytrusowych [CVV000] Wiroid karłowatości chmielu [HSVD00] |
||
Corylus avellana L. |
Wirusy, wiroidy, choroby wirusopodobne i fitoplazmy Wirus mozaiki jabłoni [APMV00] |
||
Cydonia oblonga Mill. |
Wirusy, wiroidy, choroby wirusopodobne i fitoplazmy Wirus chlorotycznej plamistości liści jabłoni [ACLSV0] Czynnik gumowatości drewna jabłoni [ARW000] Wirus żłobkowatości pnia jabłoni [ASGV00] Wirus jamkowatości pnia jabłoni [ASPV00] Czynnik nekrozy kory gruszy [PRBN00] Czynnik spękania kory gruszy [PRBS00] Wiroid pęcherzowatych zrakowaceń gruszy [PBCVD0] Czynnik szorstkości kory gruszy [PRRB00] Czynnik żółtej plamistości pigwy [ARW000] |
||
Fragaria L. | Bakterie | ||
Xanthomonas fragariae Kennedy & King [XANTFR] Grzyby i organizmy grzybopodobne Colletotrichum acutatum Simmonds [COLLAC] Phytophthora cactorum (Lebert & Cohn) J.Schröter [PHYTCC] Phytophthora fragariae C.J. Hickman [PHYTFR] Nicienie Aphelenchoides besseyi Christie [APLOBE] Aphelenchoides blastophthorus Franklin [APLOBL] Aphelenchoides fragariae (Ritzema Bos) Christie [APLOFR] Aphelenchoides ritzemabosi (Schwartz) Steiner & Buhrer [APLORI] Wirusy, wiroidy, choroby wirusopodobne i fitoplazmy Wirus mozaiki gęsiówki [ARMV00] Wirus pierścieniowej plamistości maliny [RPRSV0] Wirus marszczycy truskawki [SCRV00] Utajony wirus pierścieniowej plamistości truskawki [SLRSV0] Wirus łagodnej żółtaczki brzegów liści truskawki [SMYEV0] Wirus pstrości truskawki [SMOV00] Wirus otaśmienia nerwów truskawki [SVBV00] Wirus czarnej pierścieniowej plamistości pomidora [TBRV00] |
|||
Juglans regia L. |
Wirusy, wiroidy, choroby wirusopodobne i fitoplazmy Wirus liściozwoju czereśni [CLRV00] |
||
Malus Mill. |
Wirusy, wiroidy, choroby wirusopodobne i fitoplazmy Wirus chlorotycznej plamistości liści jabłoni [ACLSV0] Wiroid marszczenia owoców jabłek [ADFVD0] Czynnik spłaszczenia konarów jabłoni [AFL000] Wirus mozaiki jabłoni [APMV00] Czynnik gumowatości drewna jabłoni [ARW000] Wiroid bliznowatości skórki jabłek [ASSVD0] Czynnik gwiaździstego spękania jabłek [APHW00] Wirus żłobkowatości pnia jabłoni [ASGV00] Wirus jamkowatości pnia jabłoni [ASPV00] Candidatus Phytoplasma mali Seemüller & Schneider [PHYPMA] Zaburzenia owoców: drobnienie owoców [APCF00], zielone marszczenie [APGC00], nierówność owoców Ben Davis, szorstkość skórki [APRSK0], gwiaździste spękania, rdzawe pierścienie [APLP00], rdzawe brodawki Wirus pierścieniowej plamistości pomidora [TORSV0] |
||
Olea europaea L. |
Grzyby i organizmy grzybopodobne Verticillium dahliae Kleb [VERTDA] Wirusy, wiroidy, choroby wirusopodobne i fitoplazmy Wirus mozaiki gęsiówki [ARMV00] Wirus liściozwoju czereśni [CLRV00] Utajony wirus pierścieniowej plamistości truskawki [SLRSV0] |
||
Prunus dulcis (Miller) Webb |
Bakterie Xanthomonas arboricola pv. pruni (Smith) Vauterin et al. [XANTPR] Wirusy, wiroidy, choroby wirusopodobne i fitoplazmy Wirus chlorotycznej plamistości liści jabłoni [ACLSV0] Wirus mozaiki jabłoni [APMV00] Candidatus Phytoplasma prunorum Seemüller & Schneider [PHYPPR] Wirus ospowatości śliwy [PPV000] Wirus karłowatości śliwy [PDV000] Wirus nekrotycznej pierścieniowej plamistości wiśni [PNRSV0] Wirus pierścieniowej plamistości pomidora [TORSV0] |
||
Prunus armeniaca L. |
Bakterie Xanthomonas arboricola pv. pruni (Smith) Vauterin et al. [XANTPR] Wirusy, wiroidy, choroby wirusopodobne i fitoplazmy Wirus chlorotycznej plamistości liści jabłoni [ACLSV0] Wirus mozaiki jabłoni [APMV00] Utajony wirus moreli [ALV000] Candidatus Phytoplasma prunorum Seemüller & Schneider [PHYPPR] Wirus ospowatości śliwy [PPV000] Wirus karłowatości śliwy [PDV000] Wirus nekrotycznej pierścieniowej plamistości wiśni [PNRSV0] Wirus pierścieniowej plamistości pomidora [TORSV0] |
||
Prunus avium L. i Prunus cerasus L. |
Bakterie Xanthomonas arboricola pv. pruni (Smith) Vauterin et al. [XANTPR] Wirusy, wiroidy, choroby wirusopodobne i fitoplazmy Wirus chlorotycznej plamistości liści jabłoni [ACLSV0] Wirus mozaiki jabłoni [APMV00] Wirus mozaiki gęsiówki [ARMV00] Candidatus Phytoplasma prunorum Seemüller & Schneider [PHYPPR] Wirus zielonej pierścieniowej pstrości czereśni [CGRMV0] Wirus liściozwoju czereśni [CLRV00] Wirus cętkowanej plamistości liści czereśni [CMLV00] Wirus nekrotycznej rdzawej plamistości czereśni [CRNRM0] Wirus 1 i 2 drobnienia czereśni [LCHV10], [LCHV20] Wirus ospowatości śliwy [PPV000] Wirus karłowatości śliwy [PDV000] Wirus nekrotycznej pierścieniowej plamistości wiśni [PNRSV0] Wirus pierścieniowej plamistości maliny [RPRSV0] Utajony wirus pierścieniowej plamistości truskawki [SLRSV0] Wirus czarnej pierścieniowej plamistości pomidora [TBRV00] Wirus pierścieniowej plamistości pomidora [TORSV0] |
||
Prunus domestica L., Prunus salicina Lindley i inne gatunki Prunus L. podatne na wirus ospowatości śliwy w przypadku mieszańców Prunus L. |
Bakterie Xanthomonas arboricola pv. pruni (Smith) Vauterin et al. [XANTPR] Wirusy, wiroidy, choroby wirusopodobne i fitoplazmy Wirus chlorotycznej plamistości liści jabłoni [ACLSV0] Wirus mozaiki jabłoni [APMV00] Candidatus Phytoplasma prunorum Seemüller & Schneider [PHYPPR] Utajony wirus pierścieniowej plamistości mirabelki [MLRSV0] Wirus ospowatości śliwy [PPV000] Wirus karłowatości śliwy [PDV000] Wirus nekrotycznej pierścieniowej plamistości wiśni [PNRSV0] Wirus pierścieniowej plamistości pomidora [TORSV0] |
||
Prunus persica (L.) Batsch |
Bakterie Xanthomonas arboricola pv. pruni (Smith) Vauterin et al. [XANTPR] Wirusy, wiroidy, choroby wirusopodobne i fitoplazmy Wirus chlorotycznej plamistości liści jabłoni [ACLSV0] Wirus mozaiki jabłoni [APMV00] Utajony wirus moreli [ALV000] Candidatus Phytoplasma prunorum Seemüller & Schneider [PHYPPR] Utajony wiroid mozaiki brzoskwini [PLMVD0] Wirus ospowatości śliwy [PPV000] Wirus karłowatości śliwy [PDV000] Wirus nekrotycznej pierścieniowej plamistości wiśni [PNRSV0] Utajony wirus pierścieniowej plamistości truskawki [SLRSV0] Wirus pierścieniowej plamistości pomidora [TORSV0] |
||
Pyrus L. |
Wirusy, wiroidy, choroby wirusopodobne i fitoplazmy Wirus chlorotycznej plamistości liści jabłoni [ACLSV0] Czynnik gumowatości drewna jabłoni [ARW000] Wirus żłobkowatości pnia jabłoni [ASGV00] Wirus jamkowatości pnia jabłoni [ASPV00] Candidatus Phytoplasma pyri Seemüller & Schneider [PHYPPY] Czynnik nekrozy kory gruszy [PRBN00] Czynnik spękania kory gruszy [PRBS00] Wiroid pęcherzowatych zrakowaceń gruszy [PBCVD0] Czynnik szorstkości kory gruszy [PRRB00] Czynnik żółtej plamistości pigwy [ARW000] |
||
Ribes L. |
Wirusy, wiroidy, choroby wirusopodobne i fitoplazmy Wirus mozaiki gęsiówki [ARMV00] Wirus rewersji porzeczki czarnej [BRAV00] Wirus mozaiki ogórka [CMV000] Wirus otaśmienia nerwów agrestu [GOVB00] Wirus pierścieniowej plamistości maliny [RPRSV0] Utajony wirus pierścieniowej plamistości truskawki [SLRSV0] |
||
Rubus L. |
Grzyby i organizmy grzybopodobne Phytophthora spp. de Bary [1PHYTG] Wirusy, wiroidy, choroby wirusopodobne i fitoplazmy Wirus mozaiki jabłoni [APMV00] Wirus mozaiki gęsiówki [ARMV00] Wirus nekrozy jeżyny [BRNV00] Candidatus Phytoplasma rubi Malembic-Maher et al. [PHYPRU] Wirus mozaiki ogórka [CMV000] Wirus krzaczastej karłowatości maliny [RBDV00] Wirus pstrości liści maliny [RLMV00] Wirus pierścieniowej plamistości maliny [RPRSV0] Wirus chlorozy nerwów liści maliny [RVCV00] Wirus żółtej plamistości liści maliny [RYS000] Wirus żółtaczki nerwów liści maliny [RYNV00] Utajony wirus pierścieniowej plamistości truskawki [SLRSV0] Wirus czarnej pierścieniowej plamistości pomidora [TBRV00] Wirus pierścieniowej plamistości pomidora [TORSV0] |
||
Vaccinium L. |
Grzyby i organizmy grzybopodobne Phytophthora ramorum (izolaty z UE) Werres, De Cock & Man in 't Veld [PHYTRA] Wirusy, wiroidy, choroby wirusopodobne i fitoplazmy Wirus mozaiki borówki wysokiej [BLMAV0] Wirus czerwonej pierścieniowej plamistości borówki wysokiej [BRRV00] Wirus oparzeliny borówki wysokiej [BLSCV0] Wirus szoku borówki wysokiej [BLSHV0] Wirus nitkowatości borówki wysokiej [BSSV00] Candidatus Phytoplasma asteris Lee et al. [PHYPAS] Candidatus Phytoplasma pruni [PHYPPN] Candidatus Phytoplasma solani Quaglino et al. [PHYPSO] Fitoplazma pozornego kwitnienia żurawiny [PHYPFB] Wirus pierścieniowej plamistości tytoniu [TRSV0] Wirus pierścieniowej plamistości pomidora [TORSV0] |
Wykaz RNQP, których występowanie w glebie jest regulowane przepisami art. 11 ust. 1 i 2, art. 17 ust. 1 i 2 i art. 22 ust. 1 i 2
Rodzaj lub gatunek | RNQP |
Fragaria L | Nicienie |
Longidorus attenuatus Hooper [LONGAT] | |
Longidorus elongatus (de Man) Thome & Swanger [LONGEL] | |
Longidorus maaosoma Hooper [LONGMA] | |
Xiphinema diversicaudatum (Mikoletzky) Thorne [XIPHDI] | |
Jughns regia L. | Nicienie |
Xiphinema diversicaudatum (Mikoletzky) Thorne [XIPHDI] | |
Oka europaea L. | Nicienie |
Xiphinema diversicaudatum (Mikoletzky) Thorne [XIPHDI] | |
PistaciaveraL. | Nicienie |
Xiphinema index Thorne & Allen [XIPHIN] | |
Prunus avium L. i Prunus cerasus L. | Nicienie |
Longidorus attenuatus Hooper [LONGAT] | |
Longidorus elongatus (de Man) Thorne & Swanger [LONGEL] | |
Longidorus maaosoma Hooper [LONGMA] | |
Xiphinema diversicaudatum (Mikoletzky) Thorne [XIPHDI] | |
Prunus domestica L, Prunus perska (L.) Batsch i Prunus saUcina Lindley | Nicienie |
Longidorus attenuatus Hooper [LONGAT] | |
Longidorus elongatus (de Man) Thorne & Swanger [LONGEL] | |
Xiphinema diversicaudatum (Mikoletzky) Thorne [XIPHDI] | |
Ribes L. | Nicienie |
Longidorus elongatus (de Man) Thorne & Swanger [LONGEL] | |
Longidorus maaosoma Hooper [LONGMA] | |
Xiphinema diversicaudatum (Mikoletzky) Thorne [XIPHDI] | |
Rűbus L. | Nicienie |
Longidorus attenuatus Hooper [LONGAT] | |
Longidorus elongatus (de Man) Thorne & Swanger [LONGEL] | |
Longidorus maaosoma Hooper [LONGMA] | |
Xiphinema diversicaudatum (Mikoletzky) Thorne [XIPHDI] |
Wymogi dotyczące środków w odniesieniu do poszczególnych rodzajów lub gatunków oraz kategorii na podstawie art. 10 ust. 4, art. 16 ust. 4, art. 21 ust. 4 i art. 26 ust. 2
Ponadto spełnia on następujące wymogi dotyczące poszczególnych rodzajów lub gatunków oraz kategorii:
Inspekcja wzrokowa
Inspekcje wzrokowe przeprowadza się raz w roku.
Pobieranie próbek i badanie
W razie wątpliwości przeprowadza się pobieranie próbek i badanie na obecność RNQP wymienionych w załączniku I.
Wymogi dotyczące punktu produkcji, miejsca produkcji lub obszaru
W przypadku gdy dopuszczone jest zastosowanie odstępstwa w odniesieniu do produkcji materiału przed- elitarnego na polu w warunkach niezabezpieczających przed dostępem owadów, na podstawie decyzji wykonawczej Komisji (UE) 2017/925(* ), stosuje się następujące wymogi:
Wymogi dotyczące punktu produkcji, miejsca produkcji lub obszaru
Wymogi dotyczące punktu produkcji, miejsca produkcji lub obszaru
lub
-
oraz
oraz
Inspekcja wzrokowa
Inspekcje wzrokowe przeprowadza się dwa razy w roku.
Pobieranie próbek i badanie
Z każdej przedelitarnej rośliny matecznej co roku pobiera się próbki i bada sieje na obecność Spiroplasma citri Saglio et al. Z każdej przedelitarnej rośliny matecznej, trzy lata po jej dopuszczeniu jako przedelitarnej rośliny matecznej, a następnie co trzy lata, pobiera się próbki i bada sieje na obecność wirusa tristeza cytrusowych (izolatów z UE).
Z każdej przedelitarnej rośliny matecznej, sześć lat pojej dopuszczeniu jako przedelitarnej rośliny matecznej, a następnie co sześć lat, pobiera się próbki i bada się je na obecność ŔNQP innych niż wirus tristeza cytrusowych (izolaty z UE) i Spiroplasma citri Saglio et al, wymienionych w załączniku II i, w razie wątpliwości, na obecność RNQP wymienionych w załączniku I.
Inspekcja wzrokowa
Inspekcje wzrokowe przeprowadza się dwa razy w roku w odniesieniu do wirusa tristeza cytrusowych (izolaty UE), Spiroplasma citri Saglio et al. ł Plenodomus tracheiphilus (Petri) Gruyter, Aveskamp & Verkley. Inspekcje wzrokowe przeprowadza się raz w roku w odniesieniu do wszystkich RNQP innych niż wirus tristeza cytrusowych (izolaty UE), Spiroplasma citri Saglio et al. ł Plenodomus tracheiphilus (Petri) Gruyter, Aveskamp & Verkley wymienionych w załącznikach I ill.
Pobieranie próbek i badanie
W przypadku elitarnych roślin matecznych, które były utrzymywane w obiektach zabezpieczonych przed dostępem owadów, z każdej elitarnej rośliny matecznej co trzy lata pobiera się próbki i bada się je na obecność wirusa tristeza cytrusowych (izolatów z UE). Z reprezentatywnej części elitarnych roślin matecznych co trzy lata pobiera się próbki i bada sieje na obecność Spiroplasma citri Saglio et al.
W przypadku elitarnych roślin matecznych, które nie były utrzymywane w obiektach zabezpieczonych przed dostępem owadów, z reprezentatywnej części elitarnych roślin matecznych co roku pobiera się próbki i bada sieje na obecność wirusa tristeza cytrusowych (izolatów z UE) i Spiroplasma citri Saglio et al. w celu przebadania wszystkich roślin matecznych w okresie 2 lat. W przypadku dodatniego wyniku badania na obecność wirusa tristeza cytrusowych (izolatów z UE) od wszystkich elitarnych roślin matecznych w punkcie produkcji pobiera się próbki i poddaje się je badaniu. Z reprezentatywnej części elitarnych roślin matecznych, które nie były utrzymywane w obiektach zabezpieczonych przed dostępem owadów, co sześć lat pobiera się próbki i bada się je, na podstawie oceny ryzyka porażenia tych roślin, na obecność RNQP innych niż wirus tristeza cytrusowych (izolaty z UE) i Spiroplasma ritriSaglio et al, wymienionych w załącznikach I i II.
Inspekcja wzrokowa
Inspekcje wzrokowe przeprowadza się dwa razy w roku w odniesieniu do wirusa tristeza cytrusowych (izolaty UE), Spiroplasma citri Saglio et al. ł Plenodomus tracheiphilus (Petri) Gruyter, Aveskamp & Verkley. Inspekcje wzrokowe przeprowadza się raz w roku w odniesieniu do wszystkich RNQP innych niż wirus tristeza cytrusowych (izolaty UE), Spiroplasma citri Saglio et al. ł Plenodomus tracheiphilus (Petri) Gruyter, Aveskamp & Verkley wymienionych w załącznikach I ill.
Pobieranie próbek i badanie
W przypadku kwalifikowanych roślin matecznych, które były utrzymywane w obiektach zabezpieczonych przed dostępem owadów, z reprezentatywnej części kwalifikowanych roślin matecznych co cztery lata pobiera się próbki i bada sieje na obecność wirusa tristeza cytrusowych (izolatów z UE) w celu przebadania wszystkich roślin matecznych w okresie 8 lat.
W przypadku kwalifikowanych roślin matecznych, które nie były utrzymywane w obiektach zabezpieczonych przed dostępem owadów, z reprezentatywnej części kwalifikowanych roślin matecznych co roku pobiera się próbki i bada się je na obecność wirusa tristeza cytrusowych (izolatów z UE) w celu przebadania wszystkich roślin matecznych w okresie 3 lat. Z reprezentatywnej części kwalifikowanych roślin matecznych, które nie były utrzymywane w obiektach zabezpieczonych przed dostępem owadów, wprzypadku wątpliwości pobiera się próbki i bada je na obecność agrofagów, innych niż wirus tristeza cytrusowych (izolaty z UE), wymienionych w załącznikach I i II.
W przypadku dodatniego wyniku badania na obecność wirusa tristeza cytrusowych (izolatów z UE) od wszystkich kwalifikowanych roślin matecznych w punkcie produkcji pobiera się próbki i poddaje sieje badaniu.
Wymogi dotyczące punktu produkcji, miejsca produkcji lub obszaru
Inspekcja wzrokowa
Inspekcje wzrokowe przeprowadza się raz w roku.
Pobieranie próbek i badanie
Materiał rozmnożeniowy i rośliny sadownicze kategorii CAC pochodzą ze zidentyfikowanego źródła materiału, który na podstawie inspekcji wzrokowej oraz badania pobranych próbek, został uznany za wolny od RNQP wymienionych w załączniku II.
W przypadku gdy materiał ze zidentyfikowanego źródła był utrzymywany w obiektach zabezpieczonych przed dostępem owadów, z reprezentatywnej części tego materiału co osiem lat pobiera się próbki i bada sieje na obecność wirusa tristeza cytrusowych (izolatów z UE).
W przypadku gdy materiał pochodzący ze zidentyfikowanego źródła nie był utrzymywany w obiektach zabezpieczonych przed dostępem owadów, z reprezentatywnej części tego materiału co trzy lata pobiera się próbki i bada się je na obecność wirusa tristeza cytrusowych (izolatów z UE).
Wymogi dotyczące punktu produkcji, miejsca produkcji lub obszaru
Wszystkie kategorie
Inspekcja wzrokowa
Inspekcje wzrokowe przeprowadza się raz w roku.
Pobieranie próbek i badanie
W razie wątpliwości przeprowadza się pobieranie próbek i badanie na obecność RNQP wymienionych w załącznikach I i II.
Inspekcja wzrokowa
Inspekcje wzrokowe przeprowadzono w ostatnim pełnym sezonie wegetacyjnym na obecność Erwinia amyěovora (Burrill) Winslow et al.W odniesieniu do wszystkich RNQP innych niż Erwinia amyěovora (Burrill) Winslow et al. inspekcje wzrokowe przeprowadza się raz w roku.
Pobieranie próbek i badanie
Z każdej przedelitarnej rośliny matecznej, piętnaście lat po jej dopuszczeniu jako przedelitarnej rośliny matecznej, a następnie co piętnaście lat, pobiera się próbki i bada się je na obecność RNQP innych niż choroby wirusopodobne i wiroidy wymienione w załączniku II i, w razie wątpliwości, na obecność RNQP wymienionych w załączniku I.
Pobieranie próbek i badanie
Z reprezentatywnej części elitarnych roślin matecznych co piętnaście lat pobiera się próbki i bada się je, na podstawie oceny ryzyka porażenia tych roślin, na obecność RNQP innych niż choroby wirusopodobne i wiroidy wymienione w załączniku II i, w razie wątpliwości, na obecność RNQP wymienionych w załączniku I.
Pobieranie próbek i badanie
Z reprezentatywnej części kwalifikowanych roślin matecznych co piętnaście lat pobiera się próbki i bada się je, na podstawie oceny ryzyka porażenia tych roślin, na obecność RNQP innych niż choroby wirusopodobne i wiroidy wymienione w załączniku II i, w razie wątpliwości, na obecność RNQP wymienionych w załączniku I.
W razie wątpliwości z kwalifikowanych roślin sadowniczych pobiera się próbki i bada się je na obecność RNQP wymienionych w załącznikach I i II.
Wymogi dotyczące punktu produkcji, miejsca produkcji lub obszaru
Pobieranie próbek i badanie
W razie wątpliwości przeprowadza się pobieranie próbek i badanie na obecność RNQP wymienionych w załącznikach I iii.
Wymogi dotyczące punktu produkcji, miejsca produkcji lub obszaru
Wszystkie kategorie
Inspekcja wzrokowa
Inspekcje wzrokowe przeprowadza się raz w roku.
Pobieranie próbek i badanie
W razie wątpliwości przeprowadza się pobieranie próbek i badanie na obecność RNQP wymienionych w załączniku I.
Inspekcja wzrokowa
Inspekcje wzrokowe przeprowadza się dwa razy w roku w trakcie sezonu wegetacyjnego. Należy przeprowadzić inspekcję wzrokową liści Fragaria L. pod kątem występowania Phytophthorafragariae C.J. Hickman.
W przypadku materiału rozmnożeniowego i roślin sadowniczych wyprodukowanych w wyniku mikrorozmnażania, które są utrzymywane przez okres krótszy niż trzy miesiące, konieczna jest w tym okresie tylko jedna inspekcja wzrokowa.
Pobieranie próbek i badanie
Z każdej przedelitarnej rośliny matecznej rok po jej dopuszczeniu jako przedelitarnej rośliny matecznej, a następnie raz na sezon wegetacyjny, pobiera się próbki i bada się je na obecność ŔNQP wymienionych załączniku II i, w razie wątpliwości, na obecność RNQP wymienionych w załączniku I.
Pobieranie próbek i badanie
W przypadku objawów Phytophthorafragariae C.J. Hickman na liściach pobiera się i bada reprezentatywną próbę korzeni. Pobieranie próbek i badanie przeprowadza się, jeżeli objawy wirusa mozaiki gęsiówki, wirusa pierścieniowej plamistości maliny, wirusa marszczycy truskawki, utaj onego wirusa pierścieniowej plamistości truskawki, wirusa łagodnej żółtaczki brzegów liści truskawki, wirusa otaśmienia nerwów truskawki i wirusa czarnej pierścieniowej plamistości pomidora nie są jednoznaczne na podstawie inspekcji wzrokowej. W razie wątpliwości przeprowadza się pobieranie próbek i badanie na obecność RNQP innych niż wirus mozaiki gęsiówki Phytophthorafragariae C.J. Hickman, wirus pierścieniowej plamistości maliny, wirus marszczycy truskawki, utajony wirus pierścieniowej plamistości truskawki, wirus łagodnej żółtaczki brzegów liści truskawki, wirus otaśmienia nerwów truskawki i wirus czarnej pierścieniowej plamistości pomidora, wymienionych w załącznikach I i II.
Wymogi dotyczące punktu produkcji, miejsca produkcji lub obszaru
Candidatus Phytoplasma asteris Lee et al.; Candidatus Phytoplasma pruni;
Candidatus Phytoplasma solani Quaglino et al.; Verticillium albo-atrum Reinke & Berthold; Verticillium dahliae Kleb;
Podosphaera aphanis (Wallroth) Braun & Takamatsu;
W punkcie produkcji w ostatnim pełnym sezonie wegetacyjnym zaobserwowano objawy występowania wszystkich wirusów wymienionych w załącznikach I i II na nie więcej niż 1 % materiału rozmnożeniowego i roślin sadowniczych kategorii elitarnej i rośliny te oraz ten materiał rozmnożeniowy oraz wszelkie znajdujące się w bezpośrednim sąsiedztwie rośliny wykazujące objawy zakażenia zostały usunięte i natychmiast zniszczone.
Pobieranie próbek i badanie
W przypadku objawów Phytophthorafragariae C.J. Hickman na liściach pobiera się i bada reprezentatywną próbę korzeni. Pobieranie próbek i badanie przeprowadza się, jeżeli objawy wirusa mozaiki gęsiówki, wirusa pierścieniowej plamistości maliny, wirusa marszczycy truskawki, utaj onego wirusa pierścieniowej plamistości truskawki, wirusa łagodnej żółtaczki brzegów liści truskawki, wirusa otaśmienia nerwów truskawki i wirusa czarnej pierścieniowej plamistości pomidora nie są jednoznaczne na podstawie inspekcji wzrokowej. W razie wątpliwości przeprowadza się pobieranie próbek i badanie na obecność RNQP innych niż wirus mozaiki gęsiówki Phytophthorafragariae C.J. Hickman, wirus pierścieniowej plamistości maliny, wirus marszczycy truskawki, utajony wirus pierścieniowej plamistości truskawki, wirus łagodnej żółtaczki brzegów liści truskawki, wirus otaśmienia nerwów truskawki i wirus czarnej pierścieniowej plamistości pomidora, wymienionych w załącznikach I i II.
Wymogi dotyczące punktu produkcji, miejsca produkcji lub obszaru
Aphelenchoidesfragariae (Ritzema Bos) Christie;
Candidatus Phlomobacterfragariae Zreik, Bové & Gamier;
Candidatus Phytoplasma asteris Lee et al.;
Candidatus Phytoplasma fragariae Valiűnas, Staniulis & Davis;
Candidatus Phytoplasma pruni;
Candidatus Phytoplasma solani Quaglino et al.;
Chaetosiphonfragaefolii Cockerell;
Fitoplazma fyllodiozy koniczyny;
Ditylenchus dipsaci (Kuehn) Filipjev;
Meloidogyne hapla Chitwood Chitwood;
Podosphaera aphanis (Wallroth) Braun & Takamatsu;
Pratylenchus vulnus Allen & Jensen;
Rhizoctonia fragariae Hussain & W.E.McKeen;
Verticillium albo-atrum Reinke & Berthold;
Verticillium dahliae Kleb; a ten materiał rozmnożeniowy i te rośliny sadownicze oraz wszelkie rośliny żywicielskie w ich sąsiedztwie zostały usunięte i zniszczone; oraz
W punkcie produkcji w ostatnim pełnym sezonie wegetacyjnym zaobserwowano objawy występowania wszystkich wirusów wymienionych w załącznikach I i II na nie więcej niż 2 % materiału rozmnożeniowego i roślin sadowniczych kategorii kwalifikowanej i rośliny te oraz ten materiał rozmnożeniowy oraz wszelkie znajdujące się w bezpośrednim sąsiedztwie rośliny wykazujące objawy porażenia zostały usunięte i natychmiast zniszczone.
Pobieranie próbek i badanie
W przypadku objawów Phytophthorafragariae C.J. Hickman na liściach pobiera się i bada reprezentatywną próbę korzeni. Pobieranie próbek i badanie przeprowadza się, jeżeli objawy wirusa mozaiki gęsiówki, wirusa pierścieniowej plamistości maliny, wirusa marszczycy truskawki, utaj onego wirusa pierścieniowej plamistości truskawki, wirusa łagodnej żółtaczki brzegów liści truskawki, wirusa otaśmienia nerwów truskawki i wirusa czarnej pierścieniowej plamistości pomidora nie są jednoznaczne na podstawie inspekcji wzrokowej. W razie wątpliwości przeprowadza się pobieranie próbek i badanie na obecność RNQP innych niż wirus mozaiki gęsiówki Phytophthorafragariae C.J. Hickman, wirus pierścieniowej plamistości maliny, wirus marszczycy truskawki, utajony wirus pierścieniowej plamistości truskawki, wirus łagodnej żółtaczki brzegów liści truskawki, wirus otaśmienia nerwów truskawki i wirus czarnej pierścieniowej plamistości pomidora, wymienionych w załącznikach I i II.
Wymogi dotyczące punktu produkcji, miejsca produkcji lub obszaru (i) - Phytophthorafragariae C.J. Hickman
W przypadku dodatniego wyniku badania materiału rozmnożeniowego i roślin sadowniczych kategorii CAC, wykazujących objawy wirusa mozaiki gęsiówki, wirusa pierścieniowej plamistości maliny, wirusa marszczycy truskawki, utajonego wirusa pierścieniowej plamistości truskawki, wirusa łagodnej żółtaczki brzegów liści truskawki, wirusa otaśmienia nerwów truskawki oraz wirusa czarnej pierścieniowej plamistości pomidora, przedmiotowy materiał rozmnożeniowy i rośliny sadownicze zostają usunięte i natychmiast zniszczone.
Inspekcja wzrokowa
Inspekcje wzrokowe przeprowadza się raz w roku.
Pobieranie próbek i badanie
Z każdej kwitnącej przedelitarnej rośliny matecznej rok po jej dopuszczeniu jako przedelitarnej rośliny matecznej, a następnie corocznie, pobiera się próbki i bada się je na obecność RNQP wymienionych załączniku II i, w razie wątpliwości, na obecność RNQP wymienionych w załączniku I.
Pobieranie próbek i badanie
Z reprezentatywnej części elitarnych roślin matecznych co roku pobiera się próbki i bada się je, na podstawie oceny ryzyka porażenia tych roślin, na obecność RNQP wymienionych w załącznikach I i II.
Pobieranie próbek i badanie
Z reprezentatywnej części kwalifikowanych roślin matecznych co trzy lata pobiera się próbki i bada sieje, na podstawie oceny ryzyka porażenia tych roślin, na obecność RNQP wymienionych w załącznikach I i II.
W razie wątpliwości z kwalifikowanych roślin sadowniczych pobiera się próbki i bada się je na obecność RNQP wymienionych w załącznikach I i II.
Pobieranie próbek i badanie
W razie wątpliwości przeprowadza się pobieranie próbek i badanie na obecność RNQP wymienionych w załącznikach I iii.
Inspekcja wzrokowa
Inspekcje wzrokowe przeprowadza się raz w roku.
Pobieranie próbek i badanie
Z każdej przedelitarnej rośliny matecznej, piętnaście lat po jej dopuszczeniu jako przedelitarnej rośliny matecznej, a następnie co piętnaście lat, pobiera się próbki i bada się je na obecność RNQP innych niż choroby wirusopodobne i wiroidy wymienione w załączniku II i, w razie wątpliwości, na obecność RNQP wymienionych w załączniku I.
Wymogi dotyczące punktu produkcji, miejsca produkcji lub obszaru
W przypadku gdy dopuszczone jest zastosowanie odstępstwa w odniesieniu do produkcji materiału przedelitarnego na polu w warunkach niezabezpieczających przed dostępem owadów, na podstawie decyzji wykonawczej Komisji (UE) 2017/925 24 , stosuje się następujące wymogi dotyczące Candidatus Phytoplasma mali Seemüller & Schneider, Erwinia amylovora (Burrill) Winslow et al. oraz wirusa pierścieniowej plamistości pomidora:
Pobieranie próbek i badanie
W przypadku elitarnych roślin matecznych, które były utrzymywane w obiektach zabezpieczonych przed dostępem owadów, z reprezentatywnej części elitarnych roślin matecznych co piętnaście lat pobiera się próbki i bada się je na obecność Candidatus Phytoplasma mali Seemüller & Schneider.
W przypadku elitarnych roślin matecznych, które nie były utrzymywane w obiektach zabezpieczonych przed dostępem owadów, z reprezentatywnej części elitarnych roślin matecznych co trzy lata pobiera się próbki i bada się je na obecność Candidatus Phytoplasma mali Seemüller & Schneider; z reprezentatywnej części elitarnych roślin matecznych co piętnaście lat pobiera się próbki i bada się je, na podstawie oceny ryzyka porażenia tych roślin, na obecność RNQP innych niż Candidatus Phytoplasma mali Seemüller & Schneider i innych niż wirus pierścieniowej plamistości pomidora, choroby wirusopodobne i wiroidy, wymienionych w załączniku II i, w razie wątpliwości, na obecność RNQP wymienionych w załączniku I.
Z elitarnych roślin matecznych co dwadzieścia lat pobiera się próbki i bada się je na obecność wirusa pierścieniowej plamistości pomidora.
Wymogi dotyczące punktu produkcji, miejsca produkcji lub obszaru
Pobieranie próbek i badanie
W przypadku kwalifikowanych roślin matecznych, które były utrzymywane w obiektach zabezpieczonych przed dostępem owadów, z reprezentatywnej części kwalifikowanych roślin matecznych co piętnaście lat pobiera się próbki i bada się je na obecność Candidatus Phytoplasma mali Seemüller & Schneider.
W przypadku kwalifikowanych roślin matecznych, które były utrzymywane w obiektach zabezpieczonych przed dostępem owadów, z reprezentatywnej części kwalifikowanych roślin matecznych co pięć lat pobiera się próbki i bada się je na obecność Candidatus Phytoplasma mali Seemüller & Schneider; z reprezentatywnej części kwalifikowanych roślin matecznych co piętnaście lat pobiera się próbki i bada się je, na podstawie oceny ryzyka porażenia tych roślin, na obecność RNQP innych niż Candidatus Phytoplasma mali Seemüller & Schneider i innych niż wirus pierścieniowej plamistości pomidora, choroby wirusopodobne i wiroidy, wymienionych w załączniku II i, w razie wątpliwości, na obecność RNQP wymienionych w załączniku I.
Z kwalifikowanych roślin matecznych co dwadzieścia lat pobiera się próbki i bada się je na obecność wirusa pierścieniowej plamistości pomidora.
W razie wątpliwości z kwalifikowanych roślin sadowniczych pobiera się próbki i bada się je na obecność RNQP wymienionych w załącznikach I i II.
Wymogi dotyczące punktu produkcji, miejsca produkcji lub obszaru
Pobieranie próbek i badanie
W razie wątpliwości przeprowadza się pobieranie próbek i badanie na obecność RNQP wymienionych w załącznikach I i II.
Wymogi dotyczące punktu produkcji, miejsca produkcji lub obszaru
Inspekcja wzrokowa
Inspekcje wzrokowe przeprowadza się raz w roku.
Pobieranie próbek i badanie
Z każdej przedelitarnej rośliny matecznej dziesięć lat po jej dopuszczeniu jako przedelitarnej rośliny matecznej, a następnie co dziesięć lat, pobiera się próbki i bada się je na obecność RNQP wymienionych załączniku II i, w razie wątpliwości, na obecność RNQP wymienionych w załączniku I.
Pobieranie próbek i badanie
Z reprezentatywnej części elitarnych roślin matecznych pobiera się próbki w celu zbadania wszystkich roślin w okresie trzydziestoletnim, na podstawie oceny ryzyka porażenia tych roślin, na obecność RNQP wymienionych w załącznikach I iii.
Pobieranie próbek i badanie
W przypadku roślin matecznych wykorzystywanych do produkcji nasion ("nasiennych roślin matecznych") z reprezentatywnej części tych nasiennych roślin matecznych pobiera się próbki w celu zbadania wszystkich roślin w okresie czterdziestoletnim, na podstawie oceny ryzyka porażenia tych roślin, na obecność RNQP wymienionych w załącznikach I i II. W przypadku roślin matecznych innych niż nasienne rośliny mateczne z reprezentatywnej części tych roślin pobiera się próbki się w celu zbadania wszystkich roślin w okresie trzydziestoletnim, na podstawie oceny ryzyka porażenia tych roślin, na obecność RNQP wymienionych w załącznikach I i II.
Pobieranie próbek i badanie
W razie wątpliwości przeprowadza się pobieranie próbek i badanie na obecność RNQP wymienionych w załącznikach I iii.
Wszystkie kategorie
Inspekcja wzrokowa
Inspekcje wzrokowe przeprowadza się raz w roku.
Pobieranie próbek i badanie
W razie wątpliwości przeprowadza się pobieranie próbek i badanie na obecność RNQP wymienionych w załączniku I.
Inspekcja wzrokowa
Inspekcje wzrokowe przeprowadza się dwa razy w roku pod kątem występowania: Candidatus Phytoplasma prunorum Seemuller & Schneider, wirusa ospowatości śliwy, Xanthomonas arboricola pv. pruni (Smith) Vauterin et al. oraz Pseudomonas syringae pv. persicae (Prunier, Luisetti &. Gardan) Young, Dye & Wilkie (Prunus persica (L.) Batsch i Prunus salicina Lindley). Inspekcje wzrokowe przeprowadza się raz w roku pod kątem występowania wszystkich RNQP innych niż: Candidatus Phytoplasma prunorum Seemuller & Schneider, wirus ospowatości śliwy, Xanthomonas arboricola pv. pruni (Smith) Vauterin et al. i Pseudomonas syringae pv. persicae (Prunier, Luisetti &. Gardan) Young, Dye & Wilkie, wymienionych w załącznikach I i II.
Pobieranie próbek i badanie
Materiał rozmnożeniowy i rośliny sadownicze kategorii przedelitarnej gatunków Prunus armeniaca L., Prunus avium L., Prunus cerasus L., Prunus domestica L. i Prunus dulcis (Miller) Webb pochodzą od roślin matecznych, które zostały przebadane w poprzednim sezonie wegetacyjnym i uznane za wolne od wirusa ospowatości śliwy.
Przedelitarne podkładki gatunków Prunus cerasifera Ehrh. i Prunus domestica L. pochodzą od roślin matecznych, które zostały przebadane w poprzednim sezonie wegetacyjnym i uznane za wolne od wirusa ospowatości śliwy. Przedelitarne podkładki gatunków Prunus cerasifera Ehrh. i Prunus domestica L. pochodzą od roślin matecznych, które zostały przebadane w pięciu poprzednich sezonach wegetacyjnych i uznane za wolne od Candidatus Phytoplasma prunorum Seemüller & Schneider.
Z każdej kwitnącej przedelitarnej rośliny matecznej, rok po jej dopuszczeniu jako przedelitarnej rośliny matecznej, a następnie corocznie pobiera się próbki i bada się je na obecność wirusa karłowatości śliwy i wirusa nekrotycznej pierścieniowej plamistości wiśni. W przypadku Prunus persica z każdej kwitnącej przedelitarnej rośliny matecznej, rok po jej dopuszczeniu jako przedelitarnej rośliny matecznej, pobiera się próbki i bada się je na obecność utajonego wiroida mozaiki brzoskwini.
Z każdego drzewa zasadzonego z przeznaczeniem na zapylanie, a w stosownych przypadkach z głównych drzew zapylających w otoczeniu, pobiera się próbki i bada się je na obecność wirusa karłowatości śliwy i wirusa nekrotycznej pierścieniowej plamistości wiśni.
Z każdej przedelitarnej rośliny matecznej, pięć lat po jej dopuszczeniu jako przedelitarnej rośliny matecznej, a następnie co pięć lat, pobiera się próbki i bada się je na obecność Candidatus Phytoplasma prunorum Seemüller & Schneider i wirusa ospowatości śliwy.
Z każdej przedelitarnej rośliny matecznej, dziesięć lat po jej dopuszczeniu jako przedelitarnej rośliny matecznej, a następnie co dziesięć lat, pobiera się próbki i bada się je na obecność RNQP innych niż wirus karłowatości śliwy, wirus ospowatości śliwy, wirus nekrotycznej pierścieniowej plamistości wiśni oraz istotnych dla danego gatunku wymienionych w załączniku II i, w razie wątpliwości, na obecność RNQP wymienionych w załączniku I. W razie wątpliwości z reprezentatywnej części przedelitarnych roślin matecznych pobiera się próbki i bada się je na obecność Xanthomonas arboricola pv. pruni (Smith) Vauterin et al.
Wymogi dotyczące punktu produkcji, miejsca produkcji lub obszaru
W przypadku gdy dopuszczone jest zastosowanie odstępstwa w odniesieniu do produkcji materiału przedelitarnego na polu w warunkach niezabezpieczających przed dostępem owadów, na podstawie decyzji wykonawczej Komisji (UE) 2017/925, stosuje się następujące wymogi dotyczące Candidatus Phytoplasma prunorum Seemüller & Schneider, wirusa ospowatości śliwy, Xanthomonas arboricola pv. pruni (Smith) Vauterin et al., Pseudomonas syringae pv. persicae (Prunier, Luisetti &. Gardan) Young, Dye & Wilkie oraz wirusa pierścieniowej plamistości pomidora:
Inspekcja wzrokowa
Inspekcję wzrokową przeprowadza się raz w roku.
Pobieranie próbek i badanie
Z reprezentatywnej części elitarnych roślin matecznych co trzy lata pobiera się próbki i bada się je na obecność wirusa karłowatości śliwy, wirusa nekrotycznej pierścieniowej plamistości wiśni i wirusa ospowatości śliwy. Z reprezentatywnej części elitarnych roślin matecznych co dziesięć lat pobiera się próbki i bada się je na obecność Candidatus Phytoplasma prunorum Seemüller & Schneider.
Z reprezentatywnej części elitarnych roślin matecznych, innych niż przeznaczone do produkcji podkładek, co roku pobiera się próbki i bada się je na obecność wirusa ospowatości śliwy w celu zbadania wszystkich roślin w okresie dziesięciu lat.
Z reprezentatywnej części elitarnych roślin matecznych przeznaczonych do produkcji podkładek raz w roku pobiera się próbki i bada się je na obecność wirusa ospowatości śliwy w celu uznania ich za wolne od tego RNQP.
Z reprezentatywnej części elitarnych roślin matecznych gatunku Prunus domestica L. przeznaczonych do produkcji podkładek w pięciu poprzednich sezonach wegetacyjnych pobiera się próbki i bada się je na obecność Candidatus Phytoplasma prunorum Seemüller & Schneider w celu uznania ich za wolne od tego RNQP.
W razie wątpliwości z reprezentatywnej części elitarnych roślin matecznych pobiera się próbki i bada się je na obecność Xanthomonas arboricola pv. pruni (Smith) Vauterin et al.
Z reprezentatywnej części elitarnych roślin matecznych co dwadzieścia lat pobiera się próbki i bada się je, na podstawie oceny ryzyka porażenia tych roślin, na obecność wirusa pierścieniowej plamistości pomidora.
Z reprezentatywnej części elitarnych roślin matecznych co dziesięć lat pobiera się próbki i bada się je, na podstawie oceny ryzyka porażenia tych roślin, na obecność RNQP innych niż Candidatus Phytoplasma prunorum Seemüller & Schneider, wirus karłowatości śliwy, wirus nekrotycznej pierścieniowej plamistości wiśni, wirus ospowatości śliwy i wirus pierścieniowej plamistości pomidora wymienionych w załączniku II i, w razie wątpliwości, na obecność RNQP wymienionych w załączniku I.
Z reprezentatywnej części kwitnących elitarnych roślin matecznych co roku pobiera się próbki i bada się je, na podstawie oceny ryzyka porażenia tych roślin, na obecność Candidatus Phytoplasma prunorum Seemüller & Schneider, wirusa karłowatości śliwy i wirusa nekrotycznej pierścieniowej plamistości wiśni.
W przypadku Prunus persica (L.) Batsch z reprezentatywnej części kwitnących elitarnych roślin matecznych raz w roku pobiera się próbki i bada się je, na podstawie oceny ryzyka porażenia tych roślin, na obecność utajonego wiroida mozaiki brzoskwini.
Z reprezentatywnej części drzew sadzonych z przeznaczeniem na zapylanie, i, w stosownych przypadkach, głównych drzew zapylających w otoczeniu, pobiera się próbki i bada się je, na podstawie oceny ryzyka porażenia tych roślin, na obecność wirusa karłowatości śliwy i wirusa nekrotycznej pierścieniowej plamistości wiśni.
Z reprezentatywnej części niekwitnących elitarnych roślin matecznych, które nie były utrzymywane w obiektach zabezpieczonych przed dostępem owadów, co trzy lata pobiera się próbki i bada się je, na podstawie oceny ryzyka porażenia tych roślin, na obecność wirusa karłowatości śliwy, wirusa nekrotycznej pierścieniowej plamistości wiśni i Candidatus Phytoplasma prunorum Seemüller & Schneider.
Pobieranie próbek i badanie
Z reprezentatywnej części kwalifikowanych roślin matecznych co pięć lat pobiera się próbki i bada się je na obecność wirusa karłowatości śliwy, wirusa nekrotycznej pierścieniowej plamistości wiśni i wirusa ospowatości śliwy w celu przebadania wszystkich roślin w okresie piętnastu lat. Z reprezentatywnej części kwalifikowanych roślin matecznych co piętnaście lat pobiera się próbki i bada się je na obecność Candidatus Phytoplasma prunorum Seemüller & Schneider.
Z reprezentatywnej części kwalifikowanych roślin matecznych co trzy lata pobiera się próbki i bada się je na obecność wirusa ospowatości śliwy w celu zbadania wszystkich roślin w okresie piętnastu lat.
Z reprezentatywnej części kwalifikowanych roślin matecznych przeznaczonych do produkcji podkładek raz w roku pobiera się próbki i bada się je na obecność wirusa ospowatości śliwy, w celu uznania ich za wolne od tego RNQP. Z reprezentatywnej części kwalifikowanych roślin matecznych gatunków Prunus cerasifera Ehrh. i Prunus domestica L. przeznaczonych do produkcji podkładek w pięciu poprzednich sezonach wegetacyjnych pobrano próbki, zbadano je na obecność Candidatus Phytoplasma prunorum Seemüller & Schneider i uznano je za wolne od tego RNQP.
W razie wątpliwości z reprezentatywnej części kwalifikowanych roślin matecznych pobiera się próbki i bada się je na obecność Xanthomonas arboricola pv. pruni (Smith) Vauterin et al.
Z reprezentatywnej części kwalifikowanych roślin matecznych co dwadzieścia lat pobiera się próbki i bada się je, na podstawie oceny ryzyka porażenia tych roślin, na obecność wirusa pierścieniowej plamistości pomidora.
Z reprezentatywnej części kwalifikowanych roślin matecznych co piętnaście lat pobiera się próbki i bada się je, na podstawie oceny ryzyka porażenia tych roślin, na obecność RNQP innych niż Candidatus Phytoplasma prunorum Seemüller & Schneider, wirus karłowatości śliwy, wirus nekrotycznej pierścieniowej plamistości wiśni, wirus ospowatości śliwy i wirus pierścieniowej plamistości pomidora wymienionych w załączniku II i, w razie wątpliwości, na obecność RNQP wymienionych w załączniku I.
Z reprezentatywnej części kwitnących kwalifikowanych roślin matecznych co roku pobiera się próbki i bada się je, na podstawie oceny ryzyka porażenia tych roślin, na obecność Candidatus Phytoplasma prunorum Seemüller & Schneider, wirusa karłowatości śliwy i wirusa nekrotycznej pierścieniowej plamistości wiśni. W przypadku Prunus persica (L.) Batsch z reprezentatywnej części kwitnących kwalifikowanych roślin matecznych raz w roku pobiera się próbki i bada się je, na podstawie oceny ryzyka porażenia tych roślin, na obecność utajonego wiroida mozaiki brzoskwini.
Z reprezentatywnej części drzew sadzonych z przeznaczeniem na zapylanie, i, w stosownych przypadkach, głównych drzew zapylających w otoczeniu, pobiera się próbki i bada się je, na podstawie oceny ryzyka porażenia tych roślin, na obecność wirusa karłowatości śliwy i wirusa nekrotycznej pierścieniowej plamistości wiśni.
Z reprezentatywnej części niekwitnących kwalifikowanych roślin matecznych, które nie były utrzymywane w obiektach zabezpieczonych przed dostępem owadów, co trzy lata pobiera się próbki i bada się je, na podstawie oceny ryzyka porażenia tych roślin, na obecność Candidatus Phytoplasma prunorum Seemüller & Schneider, wirusa karłowatości śliwy i wirusa nekrotycznej pierścieniowej plamistości wiśni.
Wymogi dotyczące punktu produkcji, miejsca produkcji lub obszaru
Pobieranie próbek i badanie
Materiał rozmnożeniowy i rośliny sadownicze kategorii CAC pochodzą ze zidentyfikowanego źródła materiału, z którego reprezentatywnej części w poprzednich trzech sezonach wegetacyjnych pobrano próbki, zbadano je i uznano za wolne od wirusa ospowatości śliwy.
Podkładki CAC gatunków Prunus cerasifera Ehrh. i Prunus domestica L. pochodzą ze zidentyfikowanego źródła materiału, z którego reprezentatywnej części w ciągu poprzednich pięciu lat pobrano próbki, zbadano je i uznano za wolne od Candidatus Phytoplasma prunorum Seemüller & Schneider i wirusa ospowatości śliwy.
W razie wątpliwości z reprezentatywnej części materiału rozmnożeniowego i roślin sadowniczych kategorii CAC pobiera się próbki i bada się je na obecność Xanthomonas arboricola pv. pruni (Smith) Vauterin et al.
Z reprezentatywnej części roślin sadowniczych CAC niewykazujących, na podstawie inspekcji wzrokowej, objawów wirusa ospowatości śliwy pobiera się próbki i bada się je na obecność tego RNQP na podstawie oceny ryzyka porażenia tych roślin sadowniczych i w przypadku wystąpienia objawów u roślin w bezpośrednim sąsiedztwie.
Po wykryciu w punkcie produkcji, na podstawie inspekcji wzrokowej, materiału rozmnożeniowego i roślin sadowniczych kategorii CAC wykazujących objawy Candidatus Phytoplasma prunorum Seemüller & Schneider, z reprezentatywnej części pozostałych niewykazujących objawów roślin sadowniczych i materiału rozmnożeniowego kategorii CAC w partiach, w których stwierdzono obecność roślin sadowniczych i materiału rozmnożeniowego wykazujących objawy, pobiera się próbki i bada się je na obecność Candidatus Phytoplasma prunorum Seemüller & Schneider.
W razie wątpliwości przeprowadza się pobieranie próbek i badanie na obecność RNQP innych niż Candidatus Phytoplasma prunorum Seemüller & Schneider i wirus ospowatości śliwy, wymienionych w załącznikach I i II.
Wymogi dotyczące punktu produkcji, miejsca produkcji lub obszaru
Inspekcja wzrokowa
Inspekcje wzrokowe przeprowadza się raz w roku.
Pobieranie próbek i badanie
Z każdej przedelitarnej rośliny matecznej, piętnaście lat po jej dopuszczeniu jako przedelitarnej rośliny matecznej, a następnie co piętnaście lat, pobiera się próbki i bada się je na obecność RNQP innych niż choroby wirusopodobne i wiroidy wymienione w załączniku II i, w razie wątpliwości, na obecność RNQP wymienionych w załączniku I.
Wymogi dotyczące punktu produkcji, miejsca produkcji lub obszaru
W przypadku gdy dopuszczone jest zastosowanie odstępstwa w odniesieniu do produkcji materiału przedelitarnego na polu w warunkach niezabezpieczających przed dostępem owadów, na podstawie decyzji wykonawczej Komisji (UE) 2017/925, stosuje się następujące wymogi dotyczące Candidatus Phytoplasma pyri Seemüller & Schneider i Erwinia amylovora (Burrill) Winslow et al:
Pobieranie próbek i badanie
W przypadku elitarnych roślin matecznych, które były utrzymywane w obiektach zabezpieczonych przed dostępem owadów, z reprezentatywnej części elitarnych roślin matecznych co piętnaście lat pobiera się próbki i bada się je na obecność Candidatus Phytoplasma pyri Seemüller & Schneider.
W przypadku elitarnych roślin matecznych, które nie były utrzymywane w obiektach zabezpieczonych przed dostępem owadów, z reprezentatywnej części elitarnych roślin matecznych co trzy lata pobiera się próbki i bada sieje na obecność Candidatus Phytoplasma pyri Seemüller & Schneider; z reprezentatywnej części elitarnych roślin matecznych co piętnaście lat pobiera się próbki i bada się je, na podstawie oceny ryzyka porażenia tych roślin, na obecność RNQP innych niż Candidatus Phytoplasma pyri Seemüller & Schneider i innych niż choroby wirusopodobne i wiroidy, wymienionych w załączniku II i, w razie wątpliwości, na obecność RNQP wymienionych w załączniku I.
Pobieranie próbek i badanie
W przypadku kwalifikowanych roślin matecznych, które były utrzymywane w obiektach zabezpieczonych przed dostępem owadów, z reprezentatywnej części kwalifikowanych roślin matecznych co piętnaście lat pobiera się próbki i bada się je na obecność Candidatus Phytoplasma pyri Seemüller & Schneider.
W przypadku kwalifikowanych roślin matecznych, które nie były utrzymywane w obiektach zabezpieczonych przed dostępem owadów, z reprezentatywnej części kwalifikowanych roślin matecznych co pięć lat pobiera się próbki i bada się je na obecność Candidatus Phytoplasma pyri Seemüller & Schneider; z reprezentatywnej części kwalifikowanych roślin matecznych co piętnaście lat pobiera się próbki i bada sieje, na podstawie oceny ryzyka porażenia tych roślin, na obecność RNQP innych niż Candidatus Phytoplasma pyri Seemüller & Schneider i innych niż choroby wirusopodobne i wiroidy, wymienionych w załączniku II i, w razie wątpliwości, na obecność RNQP wymienionych w załączniku I.
W razie wątpliwości z kwalifikowanych roślin sadowniczych pobiera się próbki i bada się je na obecność RNQP wymienionych w załącznikach I i II.
Wymogi dotyczące punktu produkcji, miejsca produkcji lub obszaru (i) Candidatus Phytoplasma pyri Seemüller & Schneider
Pobieranie próbek i badanie
W razie wątpliwości przeprowadza się pobieranie próbek i badanie na obecność RNQP wymienionych w załącznikach I iii.
Wymogi dotyczące punktu produkcji, miejsca produkcji lub obszaru (i) Candidatus Phytoplasma pyri Seemüller & Schneider
Inspekcja wzrokowa
Inspekcje wzrokowe przeprowadza się dwa razy w roku.
Pobieranie próbek i badanie
Z każdej przedelitarnej rośliny matecznej cztery lata po jej dopuszczeniu jako przedelitarnej rośliny matecznej, a następnie co cztery lata, pobiera się próbki i bada się je na obecność RNQP wymienionych załączniku II i, w razie wątpliwości, na obecność RNQP wymienionych w załączniku I.
Inspekcja wzrokowa
Inspekcje wzrokowe przeprowadza się raz w roku.
Pobieranie próbek i badanie
W razie wątpliwości przeprowadza się pobieranie próbek i badanie na obecność RNQP wymienionych w załącznikach I iii.
Wymogi dotyczące punktu produkcji, miejsca produkcji lub obszaru
Odsetek materiału rozmnożeniowego i roślin sadowniczych kategorii elitarnej w punkcie produkcji w ostatnim pełnym sezonie wegetacyjnym, wykazujących objawy Aphelenchoides ritzemabosi (Schwartz) Steiner & Buhrer, nie przekracza 0,05 %, a ten materiał rozmnożeniowy i te rośliny sadownicze oraz wszelkie sąsiadujące z nimi rośliny żywicielskie zostały usunięte i zniszczone.
Wymogi dotyczące punktu produkcji, miejsca produkcji lub obszaru
Odsetek materiału rozmnożeniowego i roślin sadowniczych kategorii kwalifikowanej w punkcie produkcji w ostatnim pełnym sezonie wegetacyjnym, wykazujących objawy Aphelenchoides ritzemabosi (Schwartz) Steiner & Buhrer, nie przekracza 0,5 %, a ten materiał rozmnożeniowy i te rośliny sadownicze oraz wszelkie sąsiadujące z nimi rośliny żywicielskie zostały usunięte i zniszczone.
Inspekcja wzrokowa
Inspekcje wzrokowe przeprowadza się dwa razy w roku.
Pobieranie próbek i badanie
Z każdej przedelitarnej rośliny matecznej dwa lata po jej dopuszczeniu jako przedelitarnej rośliny matecznej, a następnie co dwa lata, pobiera się próbki i bada się je na obecność RNQP wymienionych załączniku II i, w razie wątpliwości, na obecność RNQP wymienionych w załączniku I.
Wymogi dotyczące punktu produkcji, miejsca produkcji lub obszaru
Inspekcja wzrokowa
W przypadku gdy materiał rozmnożeniowy i rośliny sadownicze uprawia się na polach lub w doniczkach, inspekcje wzrokowe przeprowadza się dwa razy w roku.
W przypadku materiału rozmnożeniowego i roślin sadowniczych wyprodukowanych w wyniku mikrorozmnażania, które są utrzymywane przez okres krótszy niż trzy miesiące, konieczna jest w tym okresie tylko jedna inspekcja wzrokowa.
Pobieranie próbek i badanie
Pobieranie próbek i badanie przeprowadza się, jeżeli objawy wirusa mozaiki gęsiówki, wirusa pierścieniowej plamistości maliny, utajonego wirusa pierścieniowej plamistości truskawki, wirusa czarnej pierścieniowej plamistości pomidora i wirusa pierścieniowej plamistości pomidora nie są jednoznaczne na podstawie inspekcji wzrokowej. W przypadku wątpliwości przeprowadza się pobieranie próbek i badanie na obecność RNQP innych niż wirus mozaiki gęsiówki, wirus pierścieniowej plamistości maliny, utajony wirus pierścieniowej plamistości truskawki, wirus czarnej pierścieniowej plamistości pomidora i wirus pierścieniowej plamistości pomidora, wymienionych w załącznikach I i II.
Wymogi dotyczące punktu produkcji, miejsca produkcji lub obszaru
odsetek materiału rozmnożeniowego i roślin sadowniczych kategorii elitarnej w punkcie produkcji w ostatnim pełnym sezonie wegetacyjnym, wykazujących objawy każdego z następujących RNQP, nie może przekraczać:
Agrobacterium spp. Conn; oraz
Rhodococcus fascians Tilford; a ten materiał rozmnożeniowy i te rośliny sadownicze oraz wszelkie rośliny żywicielskie w ich sąsiedztwie zostały usunięte i zniszczone;
Inspekcja wzrokowa
Inspekcje wzrokowe przeprowadza się raz w roku.
Pobieranie próbek i badanie
Pobieranie próbek i badanie przeprowadza się, jeżeli objawy wirusa mozaiki gęsiówki, wirusa pierścieniowej plamistości maliny, utajonego wirusa pierścieniowej plamistości truskawki, wirusa czarnej pierścieniowej plamistości pomidora i wirusa pierścieniowej plamistości pomidora nie są jednoznaczne na podstawie inspekcji wzrokowej. W przypadku wątpliwości przeprowadza się pobieranie próbek i badanie na obecność RNQP innych niż wirus mozaiki gęsiówki, wirus pierścieniowej plamistości maliny, utajony wirus pierścieniowej plamistości truskawki, wirus czarnej pierścieniowej plamistości pomidora i wirus pierścieniowej plamistości pomidora, wymienionych w załącznikach I i II.
Wymogi dotyczące punktu produkcji, miejsca produkcji lub obszaru
odsetek materiału rozmnożeniowego i roślin sadowniczych kategorii kwalifikowanej w punkcie produkcji w ostatnim pełnym sezonie wegetacyjnym, wykazujących objawy każdego z następujących RNQP, nie może przekraczać:
Agrobacterium spp. Conn; oraz
Rhodococcus fascians Tilford; a ten materiał rozmnożeniowy i te rośliny sadownicze oraz wszelkie rośliny żywicielskie w ich sąsiedztwie zostały usunięte i zniszczone;
Inspekcja wzrokowa
Inspekcje wzrokowe przeprowadza się raz w roku.
Pobieranie próbek i badanie
Pobieranie próbek i badanie przeprowadza się, jeżeli objawy wirusa mozaiki gęsiówki, wirusa pierścieniowej plamistości maliny, utajonego wirusa pierścieniowej plamistości truskawki, wirusa czarnej pierścieniowej plamistości pomidora i wirusa pierścieniowej plamistości pomidora nie są jednoznaczne na podstawie inspekcji wzrokowej. W przypadku wątpliwości przeprowadza się pobieranie próbek i badanie na obecność RNQP innych niż wirus mozaiki gęsiówki, wirus pierścieniowej plamistości maliny, utajony wirus pierścieniowej plamistości truskawki oraz wirus czarnej pierścieniowej plamistości pomidora i wirus pierścieniowej plamistości pomidora, wymienionych w załącznikach I i II.
Wymogi dotyczące punktu produkcji, miejsca produkcji lub obszaru
Inspekcja wzrokowa
Inspekcje wzrokowe przeprowadza się dwa razy w roku.
Pobieranie próbek i badanie
Z każdej przedelitarnej rośliny matecznej pięć lat po jej dopuszczeniu jako przedelitarnej rośliny matecznej, a następnie co pięć lat, pobiera się próbki i bada się je na obecność RNQP wymienionych załączniku II i, w razie wątpliwości, na obecność RNQP wymienionych w załączniku I.
Inspekcja wzrokowa
Inspekcje wzrokowe przeprowadza się dwa razy w roku.
Pobieranie próbek i badanie
W razie wątpliwości przeprowadza się pobieranie próbek i badanie na obecność RNQP wymienionych w załącznikach I i II.
Wymogi dotyczące punktu produkcji, miejsca produkcji lub obszaru
Inspekcja wzrokowa
Inspekcje wzrokowe przeprowadza się raz w roku.
Pobieranie próbek i badanie
W razie wątpliwości przeprowadza się pobieranie próbek i badanie na obecność RNQP wymienionych w załącznikach I i II.
Wymogi dotyczące punktu produkcji, miejsca produkcji lub obszaru
Agrobacterium tumefaciens (Smith & Townsend) Conn;
Godronia cassandrae (anamorph Topospora myrtilli) Peck;
lub
oraz
oraz
Wymogi dotyczące punktu produkcji, miejsca produkcji lub obszaru
lub
oraz
Maksymalna dozwolona liczba pokoleń na polach w warunkach niezabezpieczających przez dostępem owadów oraz maksymalna dozwolona długość cyklu życia elitarnych roślin matecznych dla poszczególnych rodzajów i gatunków, zgodnie z art. 19 ust. 1
Kategoria elitarna
Elitarna roślina mateczna w rozumieniu art. 15 ust. 2 lit. a) może być namnażana przez maksymalnie dwa pokolenia.
W przypadku gdy elitarna roślina mateczna w rozumieniu art. 15 ust. 2 lit. a) stanowi podkładkę, może ona być namnażana przez maksymalnie trzy pokolenia.
W przypadku gdy podkładki stanowią część elitarnych roślin matecznych, podkładki te uznaje się za materiał elitarny pierwszego pokolenia.
Citrus L., Fortunella Swingle i Poncirus Raf.
Kategoria elitarna
Elitarna roślina mateczna w rozumieniu art. 15 ust. 2 lit. a) może być namnażana przez maksymalnie jedno pokolenie.
W przypadku gdy elitarna roślina mateczna w rozumieniu art. 15 ust. 2 lit. a) stanowi podkładkę, może ona być namnażana przez maksymalnie trzy pokolenia.
W przypadku gdy podkładki stanowią część elitarnych roślin matecznych, podkładki te uznaje się za materiał elitarny pierwszego pokolenia.
Corylus avellana L.
Kategoria elitarna
Elitarna roślina mateczna w rozumieniu art. 15 ust. 2 lit. a) może być namnażana przez maksymalnie dwa pokolenia.
Cydonia oblonga Mill., Malus Mill. i Pyrus L.
Kategoria elitarna
Elitarna roślina mateczna w rozumieniu art. 15 ust. 2 lit. a) może być namnażana przez maksymalnie dwa pokolenia.
W przypadku gdy elitarna roślina mateczna w rozumieniu art. 15 ust. 2 lit. a) stanowi podkładkę, może ona być namnażana przez maksymalnie trzy pokolenia.
W przypadku gdy podkładki stanowią część elitarnych roślin matecznych, podkładki te uznaje się za materiał elitarny pierwszego pokolenia.
Ficus carica L.
Kategoria elitarna
Elitarna roślina mateczna w rozumieniu art. 15 ust. 2 lit. a) może być namnażana przez maksymalnie dwa pokolenia.
Fragaria L.
Kategoria elitarna
Elitarna roślina mateczna w rozumieniu art. 15 ust. 2 lit. a) może być namnażana przez maksymalnie pięć pokoleń.
Juglans regia L.
Kategoria elitarna
Elitarna roślina mateczna w rozumieniu art. 15 ust. 2 lit. a) może być namnażana przez maksymalnie dwa pokolenia.
Olea europaea L.
Kategoria elitarna
Elitarna roślina mateczna w rozumieniu art. 15 ust. 2 lit. a) może być namnażana przez maksymalnie jedno pokolenie.
Prunus armeniaca L., Prunus domestica L., Prunus dulcis (Mill.) D. A. Webb, Prunus persica (L.) Batsch i Prunus salicina Lindl.
Kategoria elitarna
Elitarna roślina mateczna w rozumieniu art. 15 ust. 2 lit. a) może być namnażana przez maksymalnie dwa pokolenia.
W przypadku gdy elitarna roślina mateczna w rozumieniu art. 15 ust. 2 lit. a) stanowi podkładkę, może ona być namnażana przez maksymalnie trzy pokolenia.
W przypadku gdy podkładki stanowią część elitarnych roślin matecznych, podkładki te uznaje się za materiał elitarny pierwszego pokolenia.
Prunus avium L. i Prunus cerasus L.
Kategoria elitarna
Elitarna roślina mateczna w rozumieniu art. 15 ust. 2 lit. a) może być namnażana przez maksymalnie dwa pokolenia.
W przypadku gdy elitarna roślina mateczna w rozumieniu art. 15 ust. 2 lit. a) stanowi podkładkę, może ona być namnażana przez maksymalnie trzy pokolenia.
W przypadku gdy podkładki stanowią część elitarnych roślin matecznych, podkładki te uznaje się za materiał elitarny pierwszego pokolenia.
Ribes L.
Kategoria elitarna
Elitarna roślina mateczna w rozumieniu art. 15 ust. 2 lit. a) może być namnażana przez maksymalnie trzy pokolenia. Rośliny mateczne są utrzymywane jako rośliny mateczne przez maksymalnie sześć lat.
Rubus L.
Kategoria elitarna
Elitarna roślina mateczna w rozumieniu art. 15 ust. 2 lit. a) może być namnażana przez maksymalnie dwa pokolenia. Rośliny mateczne każdego pokolenia utrzymuje się jako rośliny mateczne przez maksymalnie cztery lata.
Vaccinium L.
Kategoria elitarna
Elitarna roślina mateczna w rozumieniu art. 15 ust. 2 lit. a) może być namnażana przez maksymalnie dwa pokolenia.
- zmieniony przez art. 10 pkt 10 dyrektywy nr (EU) 2020/177 z dnia 11 lutego 2020 r. (Dz.U.UE.L.2020.41.1) zmieniającej nin. dyrektywę z dniem 16 lutego 2020 r.
- zmieniony przez art. 2 pkt 6 dyrektywy nr 2022/2438 z dnia 12 grudnia 2022 r. (Dz.U.UE.L.2022.319.54) zmieniającej nin. dyrektywę z dniem 2 stycznia 2023 r.
- zmieniony przez art. 1 dyrektywy nr 2025/145 z dnia 29 stycznia 2025 r. (Dz.U.UE.L.2025.145) zmieniającej nin. dyrektywę z dniem 19 lutego 2025 r.
- zmieniony przez art. 10 pkt 10 dyrektywy nr (EU) 2020/177 z dnia 11 lutego 2020 r. (Dz.U.UE.L.2020.41.1) zmieniającej nin. dyrektywę z dniem 16 lutego 2020 r.
- zmieniony przez art. 2 pkt 6 dyrektywy nr 2022/2438 z dnia 12 grudnia 2022 r. (Dz.U.UE.L.2022.319.54) zmieniającej nin. dyrektywę z dniem 2 stycznia 2023 r.
- zmieniony przez art. 1 dyrektywy nr 2025/145 z dnia 29 stycznia 2025 r. (Dz.U.UE.L.2025.145) zmieniającej nin. dyrektywę z dniem 19 lutego 2025 r.
- zmieniony przez art. 10 pkt 10 dyrektywy nr (EU) 2020/177 z dnia 11 lutego 2020 r. (Dz.U.UE.L.2020.41.1) zmieniającej nin. dyrektywę z dniem 16 lutego 2020 r.
- zmieniony przez art. 2 pkt 6 dyrektywy nr 2022/2438 z dnia 12 grudnia 2022 r. (Dz.U.UE.L.2022.319.54) zmieniającej nin. dyrektywę z dniem 2 stycznia 2023 r.
- zmieniony przez art. 1 dyrektywy nr 2025/145 z dnia 29 stycznia 2025 r. (Dz.U.UE.L.2025.145) zmieniającej nin. dyrektywę z dniem 19 lutego 2025 r.
- zmieniony przez sprostowanie z dnia 30 marca 2023 r. (Dz.U.UE.L.2023.92.28) zmieniającego nin. dyrektywę z dniem 5 listopada 2014 r.
- zmieniony przez art. 2 pkt 6 dyrektywy nr 2022/2438 z dnia 12 grudnia 2022 r. (Dz.U.UE.L.2022.319.54) zmieniającej nin. dyrektywę z dniem 2 stycznia 2023 r.
W ciągu pierwszych 5 miesięcy obowiązywania mechanizmu konsultacji społecznych projektów ustaw udział w nich wzięły 24 323 osoby. Najpopularniejszym projektem w konsultacjach była nowelizacja ustawy o broni i amunicji. W jego konsultacjach głos zabrało 8298 osób. Podczas pierwszych 14 miesięcy X kadencji Sejmu RP (2023–2024) jedynie 17 proc. uchwalonych ustaw zainicjowali posłowie. Aż 4 uchwalone ustawy miały źródła w projektach obywatelskich w ciągu 14 miesięcy Sejmu X kadencji – to najważniejsze skutki reformy Regulaminu Sejmu z 26 lipca 2024 r.
Grażyna J. Leśniak 24.04.2025Senat bez poprawek przyjął w środę ustawę, która obniża składkę zdrowotną dla przedsiębiorców. Zmiana, która wejdzie w życie 1 stycznia 2026 roku, ma kosztować budżet państwa 4,6 mld zł. Według szacunków Ministerstwo Finansów na reformie ma skorzystać około 2,5 mln przedsiębiorców. Teraz ustawa trafi do prezydenta Andrzaja Dudy.
Grażyna J. Leśniak 23.04.2025Rada Ministrów przyjęła we wtorek, 22 kwietnia, projekt ustawy o zmianie ustawy – Prawo geologiczne i górnicze, przedłożony przez minister przemysłu. Chodzi o wyznaczenie podmiotu, który będzie odpowiedzialny za monitorowanie i egzekwowanie przepisów w tej sprawie. Nowe regulacje dotyczą m.in. dokładności pomiarów, monitorowania oraz raportowania emisji metanu.
Krzysztof Koślicki 22.04.2025Na wtorkowym posiedzeniu rząd przyjął przepisy zmieniające rozporządzenie w sprawie zakazu stosowania materiału siewnego odmian kukurydzy MON 810, przedłożone przez ministra rolnictwa i rozwoju wsi. Celem nowelizacji jest aktualizacja listy odmian genetycznie zmodyfikowanej kukurydzy, tak aby zakazać stosowania w Polsce upraw, które znajdują się w swobodnym obrocie na terytorium 10 państw Unii Europejskiej.
Krzysztof Koślicki 22.04.2025Od 18 kwietnia policja oraz żandarmeria wojskowa będą mogły karać tych, którzy bez zezwolenia m.in. fotografują i filmują szczególnie ważne dla bezpieczeństwa lub obronności państwa obiekty resortu obrony narodowej, obiekty infrastruktury krytycznej oraz ruchomości. Obiekty te zostaną specjalnie oznaczone.
Robert Horbaczewski 17.04.2025Kompleksową modernizację instytucji polskiego rynku pracy poprzez udoskonalenie funkcjonowania publicznych służb zatrudnienia oraz form aktywizacji zawodowej i podnoszenia umiejętności kadr gospodarki przewiduje podpisana w czwartek przez prezydenta Andrzeja Dudę ustawa z dnia 20 marca 2025 r. o rynku pracy i służbach zatrudnienia. Ustawa, co do zasady, wejdzie w życie pierwszego dnia miesiąca następującego po upływie 14 dni od dnia ogłoszenia.
Grażyna J. Leśniak 11.04.2025Identyfikator: | Dz.U.UE.L.2014.298.22 |
Rodzaj: | Dyrektywa |
Tytuł: | Dyrektywa 2014/98/UE w sprawie wykonania dyrektywy Rady 2008/90/WE w odniesieniu do szczegółowych wymogów dotyczących rodzajów i gatunków roślin sadowniczych, o których mowa w załączniku I do tej dyrektywy, szczegółowych wymogów wobec dostawców oraz szczegółowych zasad dotyczących inspekcji urzędowych |
Data aktu: | 15/10/2014 |
Data ogłoszenia: | 16/10/2014 |
Data wejścia w życie: | 05/11/2014 |